Küster {Kiel). 



Gutli, F., Zum Nachweis von Typhus- und Paratyphus- 

 bakterien (Zentralbl. f. Bakteriol. Abt. 1, Orig. Bd. LI, 

 1909, H. 2, p. 190). 



Als neuen diagnostischen Nährboden empfiehlt Verf. Alizarin- 

 Fleischwasseragar, den man folgendermaßen herzustellen hat. 



In einem Liter Rind- oder Pferdefleischwasser werden 30 g 

 Stangenagar, 10 g Pepton und 5 g Kochsalz gelöst; der Agar soll 

 schwach alkalisch sein-, 100 cc davon sollen nach Zusatz von .5 bis 

 7 cc -^/j^Q- Normalsäure auf Lackmus neutral resp. amphoter reagieren. 

 Man stellt sich weiterhin eine Lösung von 0"6 g Natriumhydroxyd 

 und 0*8 g Alizarin (z. B. Alizarin trocken, Kahlbaum) in 100 cc 

 destilliertem Wasser her und hält die Mischung einige Minuten im 

 Sieden ; und ferner 10 g Milchzucker in 20 bis 30 cc Wasser. 

 Beide Lösungen werden dem flüssigen , mit NaOH alkalisierten 

 Agar zugesetzt ; die Farbe des Nährbodens soll dunkelblau mit 

 einem Stich ins Rötliche sein ; zeigt er einen bräunlichen Ton , so 

 war der Fleischwasseragar nicht genügend alkalisch. Die fertige 

 Mischung wird nochmals sterilisiert. Vor dem Plattengießen ist gut 

 umzuschüttein. 



Die Coli -Kolonien färben den Nährboden gelb und hellen ihn 

 auf, die Typhusbazillen bilden graublaue Kolonien und lassen ihn 

 undurchsichtig , die Angehörigen der Paratyphus - Enteritisgruppe 

 wachsen wie Typhusbazillen. Die Kolonien sind aber wie auf allen 

 Nährböden meist größer und weniger zart. 



Zusatz von Malachitgrün hemmt die Entwicklung der Coli- 



bakterien, läßt aber die Tjqjhuskolonien erst nach 40 bis 48 Stunden 



deutlich hervortreten. ^^ , ,^^. ^, 



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