304 Referate. 37,4. 



durch solches von 62° ersetzt; kleine Objekte blieben ,„im Paraffin" 

 mir etwa ^4 Stunde (S. 286). — Zur Lebendfärbung hauptsächlich 

 mit Brillantkresylblau wurde von der l°/o igen Lösung in destilliertem 

 Wasser entweder „1 Platinöse bis 1 Tropfen auf 3 — 4 ccm Wasser" 

 genommen, worin die Tiere lagen, oder auf dem Tragglase dem 

 Wassertropfen mit den Tieren etwas zugesetzt; im ersteren Falle 

 dauerte die Färbung 1 Stunde bis 1 Tag (S. 304). Fixiert wurde 

 sie mit Sublimat (375 auf 3000 Wasser und 22-5 NaCl) und ließ 

 sich dann in Euparal, Balsam oder Paraffin, zum Teil auch in 

 Apathys Gummisirup überführen (S. 305 ff. ; Verf. braucht mehrere 

 Seiten zur Darstellung der gar nicht neuen Methode, s. Lee & Mayer 

 4. Aufl. 1910, S. 138). „Mit dieser dauerhaften Vitalfärbung" — 

 die Präparate „haben sich seit vielen Wochen unverändert erhalten" 

 — war eine Kernfärbung mit Alaunkarmin oder „Hämatoxylin" ver- 

 einbart (S. 306). P. Mayer {Jena). 



Wiener, E., Amöbenfärbung (Arch. f. Protistenkde. Bd. 39, 

 1918, S. 105—106). 

 Das auf Amöben zu untersuchende „Schleimstückchen" aus dem 

 Stuhl wird vorsichtig über ein Tragglas hingezogen, seine „schmale, 

 bandartige, fast durchsichtige Spur" getrocknet und mit Methylalkohol 

 fixiert. Dann 5 Minuten in l^'/oige Jodtinktur, „Umschwenken in 

 Wasser, abtropfen lassen, Löfflers Methylenblau 1 ^/g Minuten; 

 neuerdings Umschwenken in Wasser, abtropfen lassen. Konzentrierte 

 Eosinlösung , welche mit Wasser 1 : 3 verdünnt wird , ei)ie Minute, 

 Umschwenken, zwischen Fließpapier trocknen" (S. 105). Die Methode 

 ist auch „bei Trockenfärbungen von Malariaplasmödien" verwendbar. 

 Soll im Dunkelfeld beobachtet werden, so ist das „Schleimflöckchen 

 in den auf dem, Objektträger befindlichen Tropfen physiologischer 

 Kochsalzlösung mehrere Male vorsichtig einzutauchen, das Deckglas 

 sehr vorsichtig aufzulegen" und leicht aufzudrücken (S. 106). 



P. Mayer (Jena). 



JollOS, V., Untersuchungen zur Morphologie der Amöben- 

 teilung (Arch. f. Protistenkde. Bd. 37, 1917, S. 229—275 

 m. 4 Abb. u. ,4 Tfln.). 

 Nach einigen Angaben über die Kultur der Amöben in Nähr- 

 wasser und auf Agar (rein oder mit Nährsubstanzen vermischt) stellt 

 Verf. fest, daß die Kernteilung auch auf den festen Nährböden ganz 

 regelrecht verläuft (S. 232). Von letzteren macht er einfach Ab- 

 klatsche; die Fixierung durch den Agar hindurch ist nicht besser, 

 nur umständlicher. Bei den flüssigen Kulturen werden die Deck- 

 gläser oben aufgelegt und 24 Stunden später abgenommen ; die Amöben 

 haften dann fest genug daran. Fixierung in den gebräuchlichen 

 Gemischen. Färbung außer nach Giemsa usw. besonders gut wie 

 folgt: erst in der gesättigten wässerigen Lösung von Safranin 



