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eine eiiiprozentige Lösung von Chromsäiire. 5) Auswässern (24 Stun- 

 den in mehrfach erneuertem Wasser). Härtung in steigendem Alkoliol. 

 Nach RicHTEK empfiehlt Verf. auch, um Schrumpfungen zu vermeiden, 

 die Stücke aus dem absoluten Alkohol erst in eine Mischung von 

 absolutem Alkohol und Kreosot zu gleichen Teilen zu l)ringen, dann 

 Durchtränkuug in Paraffin. Die Schnitte sollen recht dünn sein, 

 höchstens .5 /,<• U. Färbung. A. Mo dif izi e r te WsiGEKTSche 

 Gliafärbung: 1) Die aufgeklebten Paraftinschnitte werden vom 

 Paraflin befreit und dann etwa 5 Minuten in 0"5prozentiger Lösung 

 von Kaliumpermanganat oxydiert, wobei sie dunkelbraun werden. 

 2) Reduktion in dem Natrium sulfurosum- Oxalsäure -Gemische von 

 Pal, bis die Schnitte weiß sind (etwa 3 Minuten). 3) Abtrocknen 

 mit Fließpapier, Überspülen mit Weigerts Methylviolett -Oxalsäure- 

 lösung oder Bendas Kristallviolett-Anilinwasser- Gemisch (1 Vol. kalt 

 in TOprozentigem Alkohol gesättigter Kristallviolettlösung, 1 Vol. 

 lOprozentigen Salzsäure -Alkohols und 2 Vol. Anilinwasser). 4) Ab- 

 trocknen, Überspülen mit Lugol scher Lösung. Dabei hat man dar- 

 auf zu achten , daß die Einwirkung dieser Lösung nie länger als 

 eine Minute dauert. 5) Abspülen mit Wasser ; gründliches Abtrocknen 

 mit Fließpapier, dann Differenzieren mit Anilinöl-Xylol zu gleichen 

 Teilen, bis keine Farbe mehr abgeht. 6) Abtrocknen, mehrfaches 

 Überspülen mit Xylol, Balsam. Diese Methode ist die zweckmäßigste, 

 um ein scharfes Bild der Centrosomen und Basalkörperchen zu er- 

 halten. Es werden bei ihr die Kerne, Centrosomen und Basalkörper- 

 chen blau, während der Grund fast farblos ist. Infolgedessen paßt 

 diese Methode nicht zum Studium der Struktur des Zelleibes, in bezug 

 auf die Darstellung der Centrosomen und Basalkörperchen aber ist 

 sie den anderen Methoden weit überlegen. B. Eis enhämatoxy- 

 lin (modifizierte WEiGERTSche Marks cheidenfärbung). 

 1) Die Sclinitte kommen 24 Stunden lang in eine Beize von 4pro- 

 zentiger Eisenalaunlösung oder in verdünnten Liquor ferri sulfurici 

 oxydati (1:2 Vol. destillierten Wassers). 2) Abspülen in tließendeni 

 Wasser oder in mehreren Wasserschalen. 3) 24stündiges Färben in 

 dunkelgelber wässeriger Hämatoxylinlösung (hergestellt durch Ein- 

 träufeln von starker alkoholischer Hämatoxylinlösung in Wasser). 

 4) Waschen in gewöhnlichem Wasser (15 Minuten). 5) Differen- 

 zieren in Weigerts Borax -Blutlaugensalz -Mischung, bis die Schnitte 

 gelblich grau sind (oder bei Kontrolle mit schwacher Vergrößerung 

 nur noch die Zellkerne schwarz, der Grund gelb ist). 6) Auswaschen, 

 Entwässern, Balsam. Diese Färbung ist die einfachste und sicherste. 



