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Erens, E. D., Mounting Freshwater Algae, Mosses, etc. 

 (Journ. Quekett Micr. Club, Ser. 2, vol. 14, 1921, S. 225—228). 

 Die Pflanzen werden auf 1 — 2 Tage in eine Lösung gebracht, 

 die 1 — 8^1q Formol und 1 — ö^o Kupferacetat enthält — der 

 Zusatz von Kampfer dazu, wie man ihn wohl empfiehlt, schädigt die 

 natürlichen Farben — und nach sehr gutem Auswaschen (3 — 4 Stunden 

 lang) in 2^/3 — ö'^/oiges Glycerin gebracht, auf dem ein Thymolkri stall 

 schwimmt. Dies läßt man erst an einem warmen Platze, dann über 

 Calciumchlorid sich eindicken und führt zuletzt die Objekte in reines 

 Glycerin über. Noch besser ist das Verfahren von I. Jörgensen 

 (Nature, vol. 98, 1916, S. 229), worin an Stelle des Kupfers Zink 

 tritt. Man mischt 10 Teile neutralen lO^/^igen Formols mit 1 Teile 

 lO^/ßiger Lösung von Zinkacetat in „Thymolwasser" ; für zarte 

 Pflanzen verdünnt man dies Gemisch noch mit der gleichen Menge 

 destillierten Wassers. Hiermit fixiert man 2 — 3 Tage lang im Dunkeln, 

 wäscht dann das Zinksalz mit Wasser oder ö^/ßigem neutralen Formol 

 2 — 3 Stunden lang aus und bringt die Objekte, wie oben angegeben, 

 langsam in reines Glycerin (oder Glyceringelatine) oder hebt sie ohne 

 Weiteres in ö^/ßigem Formol auf (S. 226). In Glycerin hält sich das 

 Chlorophyll am besten. Das Verfahren eignet sich außer für Algen, 

 Moose, Lebermoose, Prothallien, höhere Pflanzen auch für grüne 

 Hydren usw. Für Landpflanzen sollte das Wasser zum Verdünnen des 

 Formols kurz vorher gekocht und wieder kalt geworden sein, weil es 

 dann die Luft aus den Objekten aufnimmt und so das Fixiergemisch 

 rascher eindringen läßt. Überhaupt sollten deswegen alle Fixier- 

 mittel, z. ß. Chromessigsäure, so behandelt werden, wenn sie es ver- 

 tragen (S. 227). An Stelle des venetianischen Terpentins eignet sich 

 zum Einschluß „paraffin (Burrough's and Welcome's Parolein)", wie 

 schon 1912 von A. Cole angegeben (S. 228). P. Mayer {Jena). 



Falladin, W., u. Marskaja, S., Die Entstehung der Per- 

 oxydase in den Pflanzen. Die Bedingungen, 

 welche die Abspaltung der Peroxydase vonden 

 Protoplasten und ihr Übergang in denZellsaft 

 hervorrufen (Biochem. Zeitschr. Bd. 135, 1923, S. 142 

 —157). 

 Zur quantitativen Bestimmung der Peroxydase wurde die von 

 Lubimenko ausgearbeitete kolorimetrische Methode benutzt: Vergleich 

 der Färbung, welche Guajakharzlösung durch die Peroxydase bei 

 Zugabe von etwas HgOg erfährt, mit einer bekannten Lösung von 

 Bleu de Coton. Es wurde ferner z. B. das Häutchen von der Innen- 

 fläche der Zwiebelschuppe in eine Mischung von Guajakollösung und 

 HgOj gebracht. Es färbte sich hauptsächlich Protoplasma und Zell- 

 kern. Bei keimenden Zwiebeln ist die Färbung stärker als bei nicht 

 keimenden. Liesegang {Frankfurt a. M.). 



