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sitzen in der Ebene vertilval zur optischen Ebene des Mikroskopes 

 eventuell auch mit gewölbten Wänden). Solche Zellen mit Parallelo- 

 gramm-Durchschnitt, bei denen der Protoplast sein Volumen in der 

 Ebene vertikal zur Beobachtungsebene nicht ändern kann, bei denen 

 dagegen alle Volumänderungen des Protoplasten in der optischen 

 Ebene des Mikroskopes gut sich verfolgen lassen, kommen bei Pflanzen 

 sehr häufig vor ; sie sind z. B. kennzeichnend fdr Moosblätter (Mnium) 

 und für Epidermiszellen. Es werden die plasmolysierten Zellen genau 

 mit dem Zeichenapparat gezeichnet und die Kontraktionen oder Aus- 

 dehnungen des Protoplasten verfolgt durch Messung mittels des Plani- 

 meters; oder man schneidet die Zeichnungen der Zellen und der 

 Protoplasten aus und vergleicht das Gewicht der Papierstücke. Be- 

 sonders wichtig ist diese Methode für Permeabilitätsbestimmungen. 

 Hier braucht man keine absoluten Werte für den osmotischen Wert, 

 sondern nur relative Zahlen des Plasmolysegrades. Sieht man, daß 

 das Volumen des Protoplasten in einer bestimmten Zeit sich ändert, 

 dann kann auch die grenzplasmolytische Methode den osmotischen 

 Wert nicht exakter anzeigen , bleibt aber der Plasmolysegrad für 

 einige Zeit konstant, dann kann eventuell die Methode der Grenz- 

 plasmolyse exaktere Werte liefern. F. Weber {Graz). 



Lloyd, F. E., Fluorescence in the Cyanophyceae (Trans. 



R. Soc. Canada vol. 17, 1923, S. 129—136). 

 Lloyd, F. E., A method ofultramicroscopy whereby fluo- 

 rescence in the Cyanophyceae and Diatomaceae 

 may be demonstrated (Science vol. 58, 1923, S. 91 

 —92). 

 Lloyd, F. E., The fluorescence of certain lower plants 

 (Nature vol. 112, 1923). 

 Während man bisher zur mikroskopischen Sichtbarmachung der 

 Fluoreszenz pflanzlicher Chromatophoren ultraviolettes Licht verwenden 

 mußte, gelingt dies bei folgender Anordnung auch mit gewöhnlichem 

 Licht: Dunkelfeldkondensor am besten der Kardioidtype, dünne Glas- 

 objektträger (nicht über 0'8 mm stark), dünne Deckgläser, zwischen 

 Objektträger und Kondensor Wasser, Lichtquelle am besten Bogen- 

 lampe, eventuell aber auch 400 Watt Fadenlampe mit passendem 

 Kondensor. Der Dunkelfeldkondensor wird so hochgehoben, daß der 

 Lichtkegel von der oberen Oberfläche des Deckglases reflektiert wird. 

 Das Licht fällt nach abwärts, so daß das Objekt von obenher be- 

 leuchtet und im reflektierten Lichte gesehen wird. Als Objektiv 

 wird ein Tr ock en System mittlerer Vergrößerung verwendet. Um 

 die Lichtzerstreuung im Präpai'at herabzusetzen , wird als Unter- 

 suchungsflüssigkeit starkes Glyzerin benutzt. Die Methode eignet sich 

 zur Prüfung der Fluoreszenz von Cyanophyceen und Diatomaceen und 

 Pleurococcaceen, besonders günstiges Objekt ist Oscillatoria. Auch 



