XXVIII, 2. Puschkarew: Zur Technik des Amöbenstudiums. 147 



erheblich von dem Medium der „zoologischen Kulturen" verschieden 

 war. Während die untersuchten Amöbenarten auf dem Boden der 

 „zoologischen Kulturen" zu kriechen pflegten und sich nie bis zur 

 Wasseroberfläche erhoben, wie es die Stroh- und Lohamöben, welche 

 Wasielewski und Hirschfeld untersucht haben , zu tun pflegen, 

 nahmen die Süßwasseramöben auf der Agaroberfläche die umliegen- 

 den Algen auf und verdauten sie ; ihre kontraktile Vacuole pulsierte, 

 zwar etwas verzögert, dennoch gleichmäßig weiter. Somit übt die 

 relative Trockenheit und der ungehinderte Zutritt von Sauerstoff 

 zunächst keine schädliche Wirkung auf die Amöben aus ; in einem 

 meiner Präparate fand ich sogar das letzte Stadium der Teilung 

 des Amöbenkernes, in welchem Tochterkerne dicht aneinander liegen. 

 Daraus kann man schließen, daß auch der Teilungsprozeß unserer 

 Amöben auf der Agarplatte möglich ist. Der Einwand , daß die 

 Kernteilung nicht auf der Agarplatte , sondern in der „zoologischen 

 Kultur" begonnen und sich entwickelt habe, wird dadurch hinfällig, 

 daß die Amöben in diesem Fall erst nach 21 Stunden auf Agar 

 fixiert wurden, während der Teihmgsprozeß in allen seinen Stadien 

 sich schon innerhalb weniger Minuten vollständig abspielt. 



Nachdem die Amöben auf Agar zunächst ohne Deckglas 6 bis 

 7 Stunden sich befanden, zogen sie die Pseudopodien, die gewöhn- 

 lich nach allen Richtungen sich erstrecken, ein und ließen mir die- 

 jenigen unverändert, die unmittelbar auf der Oberfläche des Agars 

 lagen. Man wartet bis zu diesem Moment , und dann beginnt die 

 Fixierung nach der folgenden, an die DEETZENSche Blutfixierung 

 angelehnten Methode von v. Wasielewski -Hirschfeld. Aus der 

 Agarplatte wird ein Stück ausgeschnitten , auf welchem zahlreiche 

 Amöben liegen (dieser Teil soll aber nicht größer als 1 qcm sein). 

 Das Stück wird in den Ring des Hansen sehen Objektträgers über- 

 tragen, vorsichtig mit einem reinen Deckgläschen bedeckt und so 

 eine halbe bis eine Stunde lang stehen gelassen. Während dieses 

 Zeitraumes schmiegen sich die Amöben an das Deckglas und kriechen 

 an ihm entlang. Dann wird der Raum zwischen dem Ring des 

 Hansen sehen Objektträgers und dem Agarteilchen mit einer fixieren- 

 den Flüssigkeit erfüllt, ohne daß die Fixierungsflüssigkeit das Deck- 

 glas direkt berührt. 



Zur Fixierung verwandte ich entweder Sublimatalkohol oder 

 2prozentige Osmiumsäure. Beide Flüssigkeiten diffundieren leicht in 

 den Agar und fixieren vorzüglich die unter dem Deckgläschen sich 

 befindenden Amöben. Die Fixierung mit 2prozentiger Osmiumsäure 



10* 



