über Aufnahme von Anilinfarber^ in lebende Zellen. 277 



Struktur eines Körpers in der augenscheinlich zum guten Theii von Flächen- 

 attraktion abhängigen Farbenspeicherung eine wesentliche Rolle spielt, so 

 kann es im allgemeinen nicht überraschen, dass mit der im Tode veränder- 

 ten Struktur das Protoplasma andere speichernde Eigenschaften annimmt. 

 Zudem werden mit dem Tode Stoffe gemengt, welche zuvor räumlich ge- 

 trennt waren, und solche Imprägnation dürfte im Protoplasma in ähnlicher 

 Weise in Betracht kommen, wie das sog. Beizen in der Färbungstechnik, in 

 welcher durch Niederschlagen von Thonerde, Eisenoxyd oder anderen Kör- 

 pern die Gewebe die Eigenschaft erhalten, Farbstoffe zu fixiren, welche sie 

 zuvor nicht zu binden vermochten (sog. adjektive Farben) . Die Existenz 

 gelöster Stoffe im Protoplasma, welche als Beize wirksam sein können, gelit 

 aber daraus hervor, dass im Leben sich nicht färbende Zellwände nach der 

 Tödtung des Protoplasmas Farbe speichern, weil sie von einem farben- 

 speichernden Körper imprägnirt wurden i). Mag dieses nun ein Eiweißstoff 

 sein (diese speichern in gelöstem Zustande nicht) oder ein anderer Körper, 

 jedenfalls ist die Möglichkeit zuzugeben , dass erst durch Imprägnation 



i) Dass schon im Leben die Wandungen einzelner oder aller Zellen Anilinfarben 

 und andere Farbstoffe speichern, wie es bei Trianea, Spirogyra u. s. w. leicht zu 

 beobachten ist, erklärt sicli zum Tlieil durch eine Imprägnation mit fremden Stoffen. 

 .Schon die Einlagerung von etwas Calciumcarbonat kann eine gewisse Wandfärbung 

 zur Folge haben, und vielfach liisst sich reichliche Speicherung von Anilinfarben, so- 

 wie von Hämatoxylin, Alizarin erzielen, indem die Zellwände zuvor oder gleichzeitig 

 mit etwas Thonerde, Eisenoxyd oder einem anderen Beizmittel (wie es ja auch in der 

 Färbungstechnik geschieht) imprägnirt werden. Solche Färbung kann recht wohl ohne 

 Todtung der Zelle bewirkt werden, und ich habe z. B. Spirogyra und Oedogonium, 

 sowie Wurzeln von Trianea weiter wachsen gesehen , deren Wandungen durch 24- 

 stündiges Verweilen in einer Losung gefärbt waren , welche etwas Hämatoxylin und 

 0,01 X Alaun oder Eisencitrat enthielt. Zu gleichem Resultate führten auch Zellwand- 

 färbungen mit Ferrocyaneisen (Berlinerblau) oder Ferridcyanei.sen (TurnbulTs Blau). 

 Namentlich war eine Färbung mit letzlerem gut zu erreichen, indem die Objekte ab- 

 wechselnd in 0,2 X Lösungen von Ferridcyankalium und milchsaurem Eisenoxydul 

 getaucht wurden. Diese Färbung, wie auch die mit Hämatoxylin, erstreckte sich in- 

 dess nur auf äußere Wandschichten, und so realisirte sich die Hoffnung nicht, auf 

 diese Weise ein Mittel zu erhallen, das den Vorgang des Dickenwachsthums der Zell- 

 wände in unzweifelhafter Weise zu entscheiden gestattet hätte. 



Die Tingirung mit fixirten Farbstoffen, die sich nicht nachträglich in der Zellwand 

 anders vertheilen können, lässt sich verwenden, um die Wachsthumsvertheilung in 

 Zellen zu verfolgen. Es gelang dieses bei Färbung mit Feriidcyaneisen sehr schön für 

 Spirogyra und Oedogonium und in einer Cladophora machte sich u. a. das schwache 

 interkalare Wachsthum älterer Zellen durch Querrisse in dem Farbstoffmantel bemerk- 

 lich. Alle Zellen mit gefärbten Wandungen wachsen indess nicht, und so blieb z. B. 

 in Wurzelhaaren von Trianea, deren Wand mit Katecliu gefärbt war, das Wachslhum 

 aus, obgleich noch nach mehreren Tagen das Protoplasma aufs schönste strömte. Die 

 Wurzelhaare von Trianea stellen freilich bei verschiedenen Einwirkungen ihr Wachs- 

 thum verhältnismäßig leicht ein (vgl. p. 2i1). Mit Rücksicht auf die Wachsthunis- 

 mechanik hat es übrigens ein tieferes Interesse, zu erforschen, wie und warum Ein- 

 lagerung fremder Theilchen in die Zellwand das Wachsthum dieser sistiren kann. 



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