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blaugelatine injiciren. Die Stnictur der Arterien, Venen, ihrer Aeste 

 und der Capillaren tritt nach einer allgemeinen Injection einer Silber- 

 nitratlösung- von 1 : 300, der man immittelbar darauf eine Injection 

 von Gelatine folgen lässt, deutlich hervor. Um die grossen Gefässe 

 finden sich Netze von Lymphcapillaren. Man kann dieselben injiciren, 

 wenn mau vorsichtig in den perivenösen Wulst der äusseren Lungen- 

 oberfläche an der Wurzel des Orgaus einsticht. Verf. hat sie sowohl 

 mit Berlinerblau- wie mit Silbergelatine injicirt. Man kann dazu die- 

 selbe Spritze und dieselbe Einstichkanüle benutzen wie zu der Injection 

 der Lymphgefässe der Säugethiere. Schiefferdecker (Bonn). 



Ranvier, L., Des clasmatocytes (Arch. d'Anat. Microsc. t. III, 

 fasc. 2, 3, 1900, p. 122—139 av. 2 plches.). 

 Nach Fixirung in Osuiiumsäure (1 bis 3 Minuten) färbt das 

 Methylviolett 5 B die Lymphkörperchen dunkelrothviolett, während 

 die Bindegewebszellen hellblau erscheinen. Unter den in Wanderung 

 begritfenen Lymphkörperchen zeigeu einige die Form von Clasmato- 

 cyteu. Verf. geht auf dieselben näher ein. Das Verfahren bei 

 Triton c r i s t a t u s : Man curarisirt das Thier , spaltet die Bauch- 

 wand und fixirt die Eingeweide mit Nadeln auf einer Korkplatte, 

 so dass das Mesenterium hinreichend gespannt ist. Man fixirt das 

 letztere durch Aufträufeln einiger Tropfen einer einprocentigen Os- 

 miumsäurelösung (Einwirkungsdauer 2 Miniiten, nicht länger!). Die 

 fixirte Membran wird herausgeschnitten und mit Methylviolett 5 B 

 gefärbt. Sodann hebt mau in Glycerin auf. Der Kern erscheint 

 schwach hellblau gefärbt, während das Protoplasma dunkelviolett ist. 

 Die Clasmatocyten des Mesenteriums von Triton sind besonders gross. 

 Es liegt das daran, dass dem Protoplasma derselben eine besondere 

 Substanz beigemischt ist, über deren chemische Natur Verf. noch 

 nicht im klaren ist. Beim Frosch wählt man am besten die Mem- 

 bran des periösophagealen Lymphsackes. Man dehnt den Sack durch 

 Einstichinjectiou von physiologischer Kochsalzlösung aus, lässt wieder 

 auf die Oberfläche ein Paar Tropfen einprocentiger Osmiumsäure 

 fallen, entfernt die Membran nach 2 Minuten und wäscht in Wasser 

 ab. Färbung auf dem Objectträger mit Methylviolett 5 B, Zusatz 

 von einem bis 2 Tropfen Glycerin an den Rand des Deckgläscheus. 

 Die Clasmatocyten sind hier sehr reichlich in den verschiedenen 

 Stellen der Membran vorhanden. Von Säugethieren hat Verf. 

 das grosse Netz des Kaninchens untersucht. Präparation wie oben 

 angegeben. Hat man die Clasmatocyten einmal nach dieser Methode 



