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Es müssen daher alle Schalen und Glasuadeln, die man beim Zer- 

 zupfen braucht, vorher gründlich mit Säure gereinigt werden. Um 

 dann Kauälclien für die Untersuchung in beliebiger Lage festzuhalten, 

 überträgt man dieselben einfach mittels einer weiten Pipette in 

 Schälchen mit Wasser, deren Boden mit etwas Lauge alkalisch ge- 

 macht ist. Da nach dem Einbringen des Kanälchens in die Schale 

 es nur langsam zu Boden sinkt, kann man es mit einiger Übung 

 während des Sinkens beliebig drehen und in richtiger Lage am 

 Boden festhaften lassen. Zum Entscheid, ob Wimperepithelien vor- 

 handen sind, wurden auch frische Nieren zerzupft. Außer den 

 Mazerationspräparaten kamen dann auch noch Schnittserien zur Unter- 

 suchung. Während zur Fixierung der Echidnaniere Carnoys Alkohol- 

 Chloroform -Essigsäure und die Zenker sehe Flüssigkeit mit bestem 

 Erfolg zur Verwendung kamen, erwies sich für die Reptilienniere das 

 BouiNSche Pikrin- Formol- Essigsäuregemisch als ideales Fixierungs- 

 mittel. Zur Färbung der Schnitte leistete besonders Mucikarmin 

 gute Dienste. Zum Studium der Gefäßverteilung wurden Injektionen 

 mit Karmingelatine , Berlinerblaumasse und in Eiweiß angeriebener 

 Tusche gemacht. Doppelinjektionen sind bei der Reptilienniere schwer 

 auszuführen, da stets die zweite Masse die erste aus den Kapillaren 

 und Wundernetzen verdrängt ; immerhin erhält man aber zuweilen 

 einzelne Partien, die befriedigende Bilder geben. 



E. Schoehel {Neapel). 



ßeetz , Cr. , Beiträge zur Anatomie und Histologie des 

 dritten Magens der Wiederkäuer (Inaug. - Diss. 

 Dresden 1911, 94 pp., 7 Figg.). 

 Aus den Mägen wurden nicht über 1 cm starke Stücke mit 

 Pinzette und gebogener Schere entnommen, die zunächst 48 Stunden 

 lang in einer etwa 4prozentigen. Formollösung fixiert wurden. Dann 

 Auswaschen durch 24 Stunden in mehrmals gewechseltem W^asser 

 und Härtung in steigendem Alkohol. Verf. hat das Material 3 Stun- 

 den lang in TOprozentigem, 6 Stunden in SOprozentigem, 12 Stunden 

 in 90prozentigem, 24 Stunden in 95prozentigem und 24 Stunden in 

 absolutem Alkohol belassen und es dann für weitere 24 Stunden in 

 eine Mischung von gleichen Teilen von absolutem Alkohol und Äther 

 übertragen. Dann kamen die Stücke in eine dünnflüssige Celloidin- 

 lösung für o Tage und für weitere 3 Tage in eine dickflüssige. Die 

 Celloidinblöcke wurden in SOprozentigem Alkohol aufbewahrt. Die 

 Schnitte wurden gefärbt mit Hämatoxylin - Eosin , mit der Weigert- 



