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wäscht mit 96prozentigem Alkohol aus. Nach einer zweiten Methode 

 fixiert man mit einem Gemiscli von 1 Prozent Osmiurasäure, 3 bis 

 4 Prozent Wasserstoffsuperoxyd und 4 Prozent Sublimat 24 Stunden 

 lang und wäscht mit Wasser aus. Beide Methoden gaben sehr gute 

 ^Resultate, besonders die zweite Abart der ersten. Ganz vorzügliche 

 Resultate lieferten ferner die vom RATHSche Flüssigkeit und eine ihr 

 ähnliche Mischung nach Boveri, bestehend aus gleichen Teilen Pikrin- 

 essigsäure und konzentrierter Sublimatlösung in 0*5prozentiger Koch- 

 salzlösung. Auch ein Gemisch von Sublimatlösung und 5 Prozent 

 Essigsäure zeigte sich als recht brauchbar. Für reife Hoden scheint 

 die starke FLEMMiNGSche Flüssigkeit sich am besten zu eignen. In 

 Perenyi scher Flüssigkeit fixiertes Material war dagegen nur für gröbere 

 anatomische Untersuchungen brauchbar. Außer Totalpräparaten, die 

 nach der von Boveri angegebenen Methode angefertigt waren, näm- 

 lich derart, daß die Atrialwand, welcher die Gonaden ansitzen, durch 

 einen etwa in der Höhe des vorderen Winkels der Myosepta ge- 

 führten Schnitt abgetrennt wurde , kamen auch Schnittserien zur 

 Untersuchung. Die Objekte wurden meist , wo die Methode es er- 

 laubte, im Stück gefärbt, und zwar mit Apäthys HämateinlA, mit 

 P. Mayers Hämalauu oder mit Grenachers Boraxkarmin. Die 

 Schnitte der mit Hämatein-Tonerde gefärbten Objekte wurden meist 

 noch mit Ammoniiimpikrat und Rubin nach Angaben von Apathy 

 nachgefärbt (0'75 g Ammoniumpikrat und 0"25 g Rubin auf 100 cc 

 lOprozentigen Alkohol ; die hierbei zur Überführung in Balsam be- 

 nutzten Alkohole müssen mit Ammoniumpikrat gesättigt sein). Diese 

 Färbung, die bei einiger Übung stets gelingt, eignet sich vortrefflich zur 

 Darstellung der histologischen Details und hat vor der van Gieson sehen 

 Färbung den Vorteil, daß die primäre Kernfärbung nicht leidet. Die 

 mit Karmin fingierten Objekte wurden mit einer wässerigen Lösung 

 von Indigkarmin und Pikrinsäure nachgefärbt (auf 100 cc Wasser 

 3 g Pikrinsäure und 0*3 g Indigkarmin; die Lösung ist unbegrenzt 

 haltbar, wird mit der Zeit sogar besser). Diese Methode kann nicht 

 warm genug empfohlen werden. Trotz ihrer Einfachheit — die 

 Schnitte werden auf 2 bis 3 Minuten in die Farblösung gestellt, mit 

 Wasser ausgewaschen und rasch durch Alkohol und Xylol oder Chloro- 

 form in Balsam übergeführt — gibt sie sehr klare Differenzierungen, 

 die sich auch für gröbere anatomische Untersuchungen gut eignen; 

 Bindegewebe und Stützsubstanz färbt sich blau in verschiedenen 

 Nuancen, Muskeln gelb bis gelbgrün, Plasma und Blutgerinnsel grün 

 bis orange, Kerne rot. E. Schoehel (Neapel). 



