ijber (lie quantitative Spreiturii; von Zellen 



129 



aSl 1.0 'JD '57 mfmg ' 



Abb. 1. FjA-KuTwc von Rindcrserum-Albumin mit Ubertra- 

 gung des Films. Ordinate: Schub in dyn/cm, Abszisse: Flii- 

 chenbedarf in m-/mg Protein; Kreise: Ubertragung. 



serumalbumin. Kraft Fliichenkurven (Force Area = 

 F A-Kurwen (Abb. 1)). Es ergeben sich fiir Proteine 

 grundsatzlich zwei Kurvenformen: Nach Dervichian 

 (5) und Joly (II) entwickelt sich der sog. A-Film aus 

 einem voUig expandierten Film und erreicht hohere 

 Schiibe bei gleicher Flache als der fiir diese Darstel- 

 lung wichtigere B-Film. Dieser bildet sich auf kleiner 

 Flache aus und weist einen ,,Eigenschub" auf. Der 

 Film altert dabei, d. h. bei gleichbleibender Flache 

 steigt der Schub mit der Dauer der Spreitung an. 

 Daraus abgeleitete Kraft Zeit (F /)-Kurven(Abb. 2) 

 zeigen das Ende dieses Prozesses an, der fiir reine 

 Proteine nach 15 Min. abgeschlossen sein sollte (3). 

 Dies ist in der Regel am isoelektrischen Punkt des 

 Proteins der Fall (6); man stellt also das Substrat 

 darauf ein. 



In einer 0.1"oigen isotonischen Albuminlosung 

 (I.E. P. pH 4,9) lassen sich Zellen, wie Erythrocyten 

 Oder Bakterien (E. coli und Proteus), suspendieren. 

 Erzeugt man damit einen Albuminfilm, so werden 

 diese mitgefijhrt. Es entsteht ein ,,Suspensionsfilm". 

 Fiir ihn lassen sich entsprechende F A- und F t- 

 Kurven aufstellen. Sind sie identisch mit denen der 

 reinen Proteinlosung, so beteiligt sich kein Zell- 

 material an der Spreitung. Sind die F /J-Kurven nach 



# 



L 



6 Mm 



(is m^tm^ 



Abb. 3. /-"//(-Kurvc einer Suspension von E. coli in Rindcr- 

 serum-Albumin. Kurvenform wie Abb. 1. Kleinerer Flachcn- 

 bedarf. Niir bei I u. 3 sichcre Ubertragung. 



links versetzt (Abb. 3), so ist Albumin an Zellbestand- 

 teilc adsorbiert und triigt damit nicht mehr zur 

 Spreitung bei, wie etwa bei Colibaktcrien. 1st dagegen 

 die Kurve nach rechts verschoben und zeigt eine 

 andere Form als der Albuminfilm, so ist spreit- 

 fahiges Material ausgetreten und befindet sich im 

 Film, wie bei Erythrocyten (Abb. 4). 



DaB diese Filme ausgesprochene Mischiilmc sind, 

 ergibt sich aus der F /1-Kurve. Eine oder mehrere 

 stufenformige Anderungen der Kurvenneigung wei- 

 sen darauf hin. Neben der mechanischen Prufung 

 aller Filmbestandteile kann man einzeinc Filmab- 

 schnitte fiir die morphologische Untersuchung her- 

 anziehen. Schon die lichtmikroskopischc Untersu- 

 chung mit Phasenkontrast zeigt z. B. bei Erythrocyten 

 (Abb. 5), dass diese nach Hiimolyse im Substrat 

 nahezu kugelig sind und durch einen B-Film von 

 Albumin und Hiimoglobin nur an einer Stelle ihrcr 

 Oberfliiche im Film fixiert werden. Der weitere Kur- 

 venverlauf und die Kontrolle der Erythrocytenhiillen 

 im Substrat zeigt, daB diese zu zerfailen hcginncn. 



200 



400 



too 



worn' 



Abb. 2. F//-Kurve von Rinderserum-Albumin. Im horizon- 

 talen Teil Beginn der Ubertragung 1 (siehe Abb. I ). 



Abb. 4. Fj A-Kur\c cines Films von Hammclblk. -Suspension 

 auf aqua dest. pH 4,9. B-Film mil deutlicher Stute, A-Film 

 nach rechts versetzt (langsam spreitendes Material). Uber- 

 tragung bei I u. 3. 



9 — 568204 Ekctron Microscopy 



