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fixirten Materials in Hoy er 'sehen Pikrokarmin oder in Grenadier 'sehen 

 wässrigen Borax-Karrain und verrautlilich aiicli mit anderen Karminlösungen 

 erhalten. 



Was die Färbung mit Haematoxylin anbelangt, so finden sich Angaben 

 iu der Literatur, dass die Kyanophycinraassen durch dasselbe nicht gefärbt 

 würden, so von Hansgi rg^), was jedoch sicher auf Irrthum beruht. 

 Schmitz^) und Strasburger ^) erwähnen, dass die Kyanophycinkörner 

 sich gegen Haematoxylin ganz ähnlich wie die Chromatinkörner verhalten. 

 Bütschli'*) färbte die Kyanophycinkörner der von ihm untersuchten 

 Bacterien mit Delafield'schem Haematoxylin. Ich habe zur Färbung be- 

 sonders Haematein-Aramoniak verwendet. Mit demselben färben die Kyano- 

 phycinmasseu sich nicht schwer, in dem Fall natürlich, dass fixirtes und 

 dann gut ausgewaschenes Material verwendet wird. Mit Chrom- oder 

 Pikrinsäure fixirtes Material von manchen TolypotJir ix- Arten, OsciUarien etc. 

 konnte ich oft dadurch schneller färben, dass ich dasselbe kurze Zeit in 

 Alkohol oder auch in schwach ammoniakalisches oder alaunhaltiges Wasser 

 einlegte. Bisweilen war es auch nöthig, die Haeaiatein-Ammoniakflüssigkeit 

 während der Zeit, dass ich Ammoniakdunst auf das zu färbende Präparat 

 einwirken liess''), mehrmals zu erneuern, um eine intensivere Färbung her- 

 vorzubringeu. üebrigens färbt sich mit Haematein- Ammoniak eine äussere 

 Schicht der Kyanopliycinköruer stets schneller, als der Kern derselben, 

 doch nimmt letzterer schliesslich auch den Farbstoff auf. Die Kyanophycin- 

 massen halten denselben, wenn er einmal aufgenommen ist, sehr fest, so 

 dass man leicht durch Auswaschen mit alaunlialtigem Wasser Präparate er- 

 halten kann, bei welchem nur die Kyanophycinmassen gefärbt sind. Diese 

 verhalten sich also in der That den Chromatinkörnern der Zellkerne höher 

 orgauisirter Organismen in dieser Beziehung sehr ähnlich. 



Andere Färbungen, als die mit Haematein-Ammoniak und Essigsäure-Kar- 

 min, sind weniger günstig, weil die Kyanophycinmassen nicht so schnell 

 und intensiv gefärbt werden können, oder eingetretene üeberfärbung nicht 

 beseitigt werden kann, ohne dass auch die Kyanophycinmassen einen grossen 

 Theil Farbstoff wieder abgeben. So wird Safranin aufgenommen, wenn 

 man das Material 12 — 24 Stunden in mit Wasser stark verdünnte alkoho- 

 lische Lösung legt. Mit Methylgrün, Fuchsin, Methylviolett, Anilinbraun 

 und anderen Anilinfarben lassen sich die Kyanophycinmassen ebenfalls nach 

 bekannten Methoden färben, doch eignen sich die Anilinfarben anscheinend 



') Hansgirg: Physiol. und algologisolie Studien, S. 9. 



2) Seh mit 7.: Untersuchungen über die Struetur des Protoplasmas und der Zell- 

 kerne iu dem Sitzungsber. d. niederrhein. Geseliscli. in Bonn. 1880. S. 197. 



3) Strasburger: Bot. Praktiivuni 1887, 2. Aufl., S. 340. 



*) O. Bütschli: Ueber den Bau der Bacterien luid verwandter Organismen. 

 Leipzig 1890, S. 11. 



öj Vergl. über die von mir angegebene Methode der Färbung mit Haematein- 

 AuMiii/nial;, Co Im 's Beiträge zur Biologie der Pflanzen, Bd. 5, S. 363 Anmerkung. 



