498 Botanisches Centralblatt. — Beiheft 8. 



mir die Bilder immer etwas schärfer, als in Glycerin, und ich 

 habe so Alles g-esehen, was überhaupt zu sehen ist. 



Zur Herstellung von Dauerpräparaten lässt sich Glycerin 

 verwenden ; ich habe aber für zweckmässig gefunden, demselben 

 so viel Eosin beizusetzen, dass es eine schwach röthliche Färbung 

 zeigt. Die Membran selbst wird dadurch nicht oder doch kaum 

 merklich gefärbt, wohl aber (nach dem Abstei-ben der Pflanze) 

 der Zellinhalt. Diese Färbung stört bei der Untersuchung eben- 

 sowenig, wie die ursprüngliche grüne Farbe ; sie ist sogar von 

 Nutzen, da von ihr aus schwache Reflexe in den Lamellen ent- 

 stehen, welche deren Verlauf deutlicher machen. 



Nachtheilig erwiesen sich an frischem Materiale alle Mittel, 

 welche eine leichte Quellung hervorriefen, so : schwache Säuren, 

 Kali, Chloralhjdrat und auch Formol. 



Einen ähnlichen Endeffect, wie Eosin, erzeugen Methylgrün- 

 essig und Methylviolett, welche zwar die lebende Membran intensiv 

 färben, nach dem Tode der Zelle aber vollständig in letztere 

 übergehen.^) 



Stoffe, welche die Membran dauernd färben, wie z. B. Alaun, 

 Hämatoxilin und Safranin, sind nur in sehr verdünnten Lösungen bis- 

 weilen brauchbar, da sie leicht die Transparenz der Schichten stören. 

 Die Cultur in Congoroth hat mir keinen besonderen Nutzen ge- 

 bracht; in Lösungen von 1 pro mille färben sich die Membranen 

 nur schwach und un regelmässig.'-) 



Nicht nur frisches Material, sondern auch conservirtes kann 

 mit Vortheil untersucht werden, besonders solches, welches in 

 Alkohol aufbewahrt war. Dieses zeigt nach Monaten die Gelenk- 

 lamellen noch sehr deutlich. 



Selbst Exsiccate sind für den, welcher die Verhältnisse schon 

 an lebenden Pflanzen untersucht hat, nicht ganz werthlos. Die 

 Algen müssen längere Zeit in destillirtem Wasser aufgeweicht 

 werden. Wenn dann zur Entfernung der Epiphyten und Verun- 

 reinigungen der Pinsel nicht genügt, empflehlt sich kurzes Einlegen 

 in eine Mischung von Alkohol und Vsprocentiger Salpetersäure, 

 oder auch in lOprocentige Schwefelsäure. Die Lamellen bleiben 

 dabei oft recht deutlich erhalten. 



Auch bei frischem Materiale ist letztere Methode zur Controle 

 dessen, was man ohne Keagentien gesehen hat, bisweilen mit 



Methylgrünessig färbt in einzelnen Fällen auch die Membranen 

 lebloser Cladophora-Zellen, besonders wenn die Lösung sehr concentrirt ist. 

 In der Regel geht aber die Farbe hier sofort in's Cytoplasma über, worauf 

 in den CladophoraStndien p. 151 ((5.) schon aufmerksam gemacht ist. 



^) Entschiedenere Färbung bestimmter (neuer) Scliichten, wie solche 

 Bohl in. Studier öfver etc. Alggruppen Conervales (Bihang tili K. Svenska 

 Vet.-Acad. Handlingar. Bd. XXIII. Afd. III. No. 3. p. 50) bei Conferva und 

 Luther, Ueber Chloroaaccus etc. übid. Bd XXIV. Afd. III. No. 13. p. 6) bei 

 Chlorosaccus gesehen, konnte ich bei Cladophora giomerala nicht erzielen. Im 

 Ganzen schienen sich sowohl die ältesten Membranabschnitte (starke Stämme) 

 iils die jüngsten (Zweig-Primordien und -Spitzen) lebhafter zu färben. 



