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ganisées. Ce résultat est probablement dû à l'acide acétique 

 qui sert à neutraliser et qui reste en excès. 



F. HypocI?lorite de soude. — Ce réactif, au moment de 

 sa pénétration, et avant qu'il n'ait eu le temps de détruire la 

 cellule, communique une coloration orangée immédiate et 

 très nette aux vacuoles des cellules tannifères. 



G. Eau iodo iodurée. — Il se fait une coloration orangée 

 des cellules à tannins et c'est le suc cellulaire des vacuoles qui 

 prend cette coloration (i). 



Dans les cellules cylindriques du tissu en palissade, il n'y a 

 pas d'amidon : si l'emploi de l'eau iodée n'a pas été prolongé, 

 les plastes restent verts tandis que les vacuoles à tannins 

 prennent une teinte orangée. 



Cette coloration remarquable peut ne pas être duc aux tan- 

 nins, mais provenir d'autres substances du suc cellulaire 

 présentes (Alcaloïdes, Albumino'ides) ; une solution alcoolique 

 d'iode ne donne pas une différenciation analogue. 



H. Essais de cyaijure de K. — Emploi cViine solution con- 

 centrée. — Au bout d'une heure, il n'y a aucune coloration 

 des cellules à tannin ; après 24 heures, pas davantage de colo- 

 ration, il faut en conclure qu'il n'y a pas d'acide gallique dans 

 les vacuoles. 



1. Essai des réactifs des tannins après l'action des 

 fixateurs. — L'alcool employé comme fixateur des feuilles 

 dissout rapidement le tannin. Les vacuoles ne donnent plus 

 en effet les réactions caractéristiques, ni avec l'acide osmique, 

 ni avec le bichromate. 



Après fixation au formol à ^o 0/0, tous les réactifs des 

 tannins peuveiit être employés avec succès: le formol conserve 

 donc très bien le tannin et le rend d'ailleurs insoluble, car les 

 feuilles qui ont été ainsi fixées peuvent être ensuite conservées 

 sans inconvénient dans l'alcool. Sur des feuilles ainsi fixées 

 et conservées, on pourra donc plus tard localiser le tannin, 



(i) Il s'agit d'une coloration du suc vacuolaire sans précipitation. 



