282 Wilhelm Wollenweber: 



Ich halte das Vorkommen derselben in Mehrzahl mid ihre 

 Lage an beliebigen Stellen des peripheren Chromatophors für gattungs- 

 typisch. 



II. Biologisches. 



Einige Bemerkungen, die sich auf die Biologie der Haemato- 

 coccen beziehen, sind schon in die früheren Abschnitte eingeflochten. 

 Es sollen hier nur in kurzen Zügen einige Beobachtungen, die 

 gelegentlich gemacht sind, zusammengestellt werden. 



Ein buntes Durcheinander von Tatsachen hat sich ergeben mit 

 Bezug auf Zusammenhang zwischen Agamogonie und Gamogonie, 

 auf Phototaxis, Reaktion auf verschiedene Nährmedien usw. \Yelcher 

 von den vielen einwirkenden Faktoren, die die einzelnen Er- 

 scheinungen auslösen, in jedem Falle die Hauptrolle spielt, Licht, 

 Temperatur, Nahrungsstoffe, Jahreszeit, Luftdruck, absorbierte 

 Gase usw., das festzustellen, muss eine Aufgabe der Zukunft sein. 



Wichtig ist, dass es geluugen ist, einen geschlossenen Ent- 

 wicklungszyklus bei Baematococcus in künstlichen Nährmedien zu 

 verfolgen. Zeitraubende Sterilisierung der Nährmedieu ist auch bei 

 Anwendung organischer Substanzen, Asparagin, Zucker, Stärke usw. 

 nicht durchaus notwendig. Der Haematococcus will diese Stoffe gar 

 nicht in frischem Zustande, er lässt dieselben doch erst durch 

 Bakterien umwandeln. Keine Nährlösung mit ausschliesslich 

 organischen Substanzen erzeugte mir, frisch angewandt, eine lebens- 

 frische Algenvegetation. Anorganische Lösungen waren dagegen 

 sogleich zu verwenden und gestatteten bei H. Droebakensis eine ganz 

 leidliche agamogene Vermehrung der Zoosporen, bei H. pluvialis eine 

 sehr gute. 



Die Gamogonie 1) blieb entweder aus oder trat doch sehr zurück, 

 so dass selten eine einwandsfreie Kopulation zu seilen war. Es hilft 

 eine Agarunterlage (1 pCt.), die ich nach ElCHTER's (1903) für 

 Diatomeen verwendete Methode mit Nährsalzen beschickte. Im 

 Reagenzglase mit viel Agar, wenig (2—3 ccm) Nährmedium (KnOP 

 0,2 — 0,35 pCt.) konnte die Vermehrung zunächst einige Zeit agamogen, 

 dann aber auch gamogen beobachtet werden. 



Rote Zoos])oren von H. phivialis wurden unter diesen Kultur- 

 bedingungen grün (Knop 0,2 pCt. auf Agar 1 pCt.). Lässt man den 

 Agar fort, so verharrt ein Teil des Haematochroms hartnäckig in 

 den Zellen. In beiden Fällen war die Dauer der beweglichen Zu- 

 stände verschieden. Agarunterlage verkürzt den Zoosporenzustand, 

 alleinige Anwendung von KnoP 0,2 pCt. verlängert ihn bis über 



l) Gamogonie bezieht sich nur auf //. Droehaknisis. 



