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welche mit 4,1 % Glycerin isotonisch waren, 

 trat in den normalen Fäden meiner Spirogyra 

 schwache Plasmolyse ein, diese verschwand 

 aber nachher nicht. Diese Substanzen drin- 

 gen also bei Weitem nicht so leicht durch 

 das Protoplasma hindurch, wie Glycerin. 



Zur Controle habe ich auch Fäden in 

 4,1 % Glycerin gebracht, dann nach einem 

 Tag in 5,5^, und nach einem weitern Tag 

 in 6,9^. Sie blieben hier nun wochenlang 

 frisch und lebendig. 



Stärkebildung im Dunkeln in vorher durch 

 Verdunkelung 'jentstärkten Fäden beobachtete 

 ich in Lösungen von 4,1 % , bei etwa 25° C. 

 Schon nach einem Tage, als die Plasmolyse 

 noch nicht völlig verschwunden war, hatte 

 die Stärkebildung bereits angefangen; nach 

 drei Tagen waren die Amylumkerne der 

 Chlorophyllbänder jeder von zahlreichen 

 kleinen, sich mit Jod bläuenden Körnchen 

 umgeben. In schwächeren Lösungen (0,15 bis 

 2,8^) und bei 12° C. bildeten entstärkte 

 Spirogyren im Dunkeln in meinen Versuchen, 

 wenigstens in vielen Tagen, keine Stärke. 

 Doch blieben sie dabei viel länger frisch und 

 lebendig, als die Fäden, welche zur Controle 

 im Dunkeln einfach in Wasser aufbewahrt 

 wurden. Offenbar reichte das aufgenommene 

 Glycerin zwar zur Ernährung und zum 

 Wachsthum , nicht aber zur Anhäufung von 

 Reservematerial hin. Wichtig ist aber, dass 

 nicht nur plasmolysirende, sondern auch sehr 

 schwache Lösungen in das lebende Proto- 

 plasma hineindringen können. Auch in Lö- 

 sungen von Traubenzucker und Rohrzucker 

 lebten entstärkte Spirogyren im Dunkeln be- 

 deutend länger als in reinem Wasser. Ich 

 benutzte Concentrationen, welche nicht plas- 

 molysirten und zwar 1,3 und 2,7 % Trauben- 

 zucker, und 2,56 und 5,13 ^ Rohrzucker. 

 Diese sind mit 0,5 und 1,0 % KNO ;i und also 

 auch mit 0,69 und 1,38 ^ Glycerin isoto- 

 nisch. 



Lässt man Fäden, welche in 6,9 % Glyce- 

 rin ihre Plasmolyse völlig ausgeglichen haben, 

 nun in einer isotonischen Rohrzuckerlösung 

 (25,65^) weiter vegetken, so verschwindet 

 das Glycerin, theils durch Verbrauch, theils 

 durch Diffusion , in wenigen Tagen so voll- 

 ständig, dass die Zellen allmählich sehr stark 



J ) Den auffallenden Einfluss des Lichtmangels auf 

 den Bau der Zellen von Spirogyra hat Famintzin 

 beschrieben. Melanges biologiques. T. VI. 1867. 

 S.277. 



plasmolysirt werden , obgleich sie in den 

 ersten Stunden die erwähnte Zuckerlösung 

 ohne Contraction ertrugen. 



Nachdem somit festgestellt war, dass Spiro- 

 gyra sich dem Glycerin gegenüber genau so 

 verhält, wie Zygnema, entstand die Frage, ob 

 auch bei höheren Pflanzen das Protoplasma 

 für Glycerin in plasmolytisch nachweisbarem 

 Grade permeabel ist. 



Zunächst untersuchte ich Tradescantia dis- 

 color, und zwar die Zellen der violetten Ober- 

 haut der Blattunterseite. In Lösungen von 

 2,5 — 2,8^" Glycerin trat in mehreren Ver- 

 suchen innerhalb einer Stunde in sämmt- 

 lichen Zellen Plasmolyse ein, welche aber in 

 den nächsten Stunden wieder vollständig 

 verschwand, ohne dass das Protoplasma einen 

 erkennbaren Schaden genommen hatte, und 

 namentlich ohne sichtliche Aenderung in 

 Kern und Hautschicht. Genau so verhielten 

 sich die blass violetten Zellen der unterseiti- 

 gen Blattoberhaut von Tradescantia zebrina ; 

 in einer Lösung von 4,6 % waren sie in kur- 

 zer Zeit sämmtlich plasmolysirt, nach 24 Stun- 

 den hatten sich die Protoplaste aber wieder 

 auf das normale Maass ausgedehnt. Die braun- 

 rothen Streifen auf den Blättern von Vriesea 

 splendens verhielten sich in 3,9^" Glycerin 

 ähnlich. Nach einer halben Stunde waren 

 in dünnen Schnitten sämmtliche Zellen plas- 

 molysirt, nach weiteren 2 Stunden war die 

 Plasmolyse ausgeglichen. Die Markzellen 

 ausgewachsener Internodien von Coleus Ver- 

 sehaffelti wurden von 3,3 % Glycerin in zwei 

 Stunden plasmolysirt; nach einem Tag war 

 die Erscheinung in den meisten , nach zwei 

 Tagen in sämmtlichen Zellen verschwunden, 

 ohne dass diese dabei wesentlichen Schaden 

 erlitten hatten. 



Leichter und sicherer kann man das Ver- 

 schwinden der Plasmolyse in normalen Zellen 

 beobachten, wenn man die Schnitte zunächst 

 in plasmolysirende Rohrzuckerlösungen, und 

 sobald sämmtliche Zellen plasmolysirt sind, 

 in isotonische Glycerinlösungen bringt. Man 

 umgeht dann den Nachtheil, dass das Glyce- 

 rin vor der Plasmolyse in den Zellsaft ein- 

 dringt, und das Eintreten dieses Zustandes 

 somit beeinträchtigt. Die Ausdehnung der 

 Protoplaste kann dann in schwächeren Lö- 

 sungen als beim directen Einbringen in Gly- 

 cerin beobachtet werden. Ich benutzte Lösun- 

 gen von 10,3 und 12,3^ Rohrzucker, welche 

 mit 2,8 und 3,3^" Glycerin isotonisch 

 sind. Als Präparate benutzte ich Schnitte 



