SPEBMATOGÉNÈSE DES BATRACIENS 299 



FIS. 1. Coupe totale d'un petit lobe testiculaire de Triton alpestris en mars. On voit en haut la zo D e à spermato- 

 gonies, en bas la zone renfermant les cystes de spermatozoïdes. Les caractères sexuels secondaires : 

 crête, couleurs vives, étaient bien développés chez cet animal.) 



Fio. 2. Coupe d'un lobe de taille comparable au précédent chez la même espèce, en mai (moment de l'accouple- 

 ment). La plage à gonies a un peu augmenté, les cystes à spermatozoïdes sont partiellement vidés, 

 une partie est remplacée par du tissu glandulaire bourré de graisse. 



Fia. 3. Coupe d'un lobe testiculaire chez la même espèce, au commencement de juillet. Les spermatogonies ont 

 augmenté et sont partiellement transformées en spermatocytes (noyaux plus foncés), d, cystes 

 dégénérescents. Le tissu glandulaire est encore bien développé. Fin juillet, il a complètement disparu. 



Fig. 4. Coupe dans un testicule de Bombinator pachypus en novembre. Tubes séminifères bien nets, poussées 

 préspermatogénétiques. 



FIG. 5. Coupe dans un testicule d'un animal de même espèce, en juillet. Tubes séminifères indistincts. Poussée 

 spermatogénétique véritable. (Le grossissement est un peu plus fort que fig. 4.) 



Fia. 6. Coupe dans un testicule de Rana esculenta en janvier. Poussées préspermatogénétiques, tissu interstitiel 

 bien développé. Les spermatozoïdes ne sont pas disposés en faisceaux. 



FIG. 7. Coupe dans un testicule chez la même espèce en juillet. Poussée spermatogénétique véritable. Les tubes 

 séminifères sont mal distincts. Le tissu interstitiel a régressé. 



Fio. 8. Coupe dans un testicule de Rana temporaria en janvier. Spermatozoïdes groupés en faisceaux bien nets. 

 Spermatogonies rangées le long de la paroi des tubes. Pas trace de poussées préspermatogénétiques. 



Fig. 9. Coupe dans un testicule chez la même espèce en mars (Accouplement); évacuation des spermatozoïdes. 



FIG. 10. Coupe dans un testicule chez la même espèce fin mars. Le tissu interstitiel est bien développé. Les tubes 

 séminifères sont vides de spermatozoïdes, on y rencontre des gonies I et des noyaux de Sertoli qui 

 se clivent activement. 



Fig. 11. Portion de la même coupe que fig. 6 (plus grossie) g, gonies ï;ey, spermatocytes ; ce, canal efférent : 

 z, spermatozoïdes ; s, cellule de Sertoli ; end, cellules aplaties limitant les travées de tissu inters- 

 titiel. 



FIG. 12. Même coupe que fig. 7. Mêmes lettres que fig. 8, si, spermatide. \ 



Fig. 13. Même coupe que fig. 8 (mêmes lettres.) | même grossissement que fig, 11. 



Fig. 14. Même coupe que fig. 10. 



FIG. 15 et 16. Trois stades de l'évolution du cyste chez un Urodèle (Axolotl), a, cyste à gonie primitive ; 6, cyste 

 à spermatogonies II peu nombreuses, début du cloisonnement en cystes secondaires ; c, cyste 

 à gonies II très nombreuses cloisonné en cystes secondaires. 



PLANCHE III 



Cellules indifférentes ou gonies primitives. 



Fig. 17 à 23. Gonies primitives de Bombinator igneus. Fixation au liquide de Bouin. Coloration : fer-Bordeaux- 

 Vert lumière. 

 Fig. 17. Noyau à son état moyen, sphère entourée d'un anneau mitochondrial. Il y a une petite condensation 



mitochondriale en dehors de la sphère. Corps pyTénoïdes en vert. 

 Fig. 18. Le noyau est coupé seulement à ses deux extrémités. Figures mitochondriales en halo. Sphère à longues 



irradiations probablement artificielles. 

 FIG. 19. Noyau au minimum de polymorphisme avec une invagination. Concentration des mitochondries vers la 



sphère. 

 Fig. 20. Noyau à son maximum de polymorphisme avec incisures. Corps mitochondrial compact. 

 Fig. 21. Noyau très polymorphe avec cytoplasme finement granuleux. Arrangement en série de la chromatine. 



Un lobe du noyau séparé est en dégénérescence. Cet état de la cellule peut être rattaché à l'évolution 



oviforme. 

 Fig. 22. Prophase avancée, fuseau central. 

 Fig. 23. Métaphase. 



Fio. 24 à 33. Gonies primitives chez Hyla arborea. 

 Fig. 24, 25. Noyaux au maximum de polymorphisme avec incisures. 

 Fig. 26, 27. Noyaux au minimum de polymorphisme. Fig. 26, un nucléole structuré se trouve isolé dans un 



lobe étroit du noyau. Fig. 27, anneau mitochondrial et corps pyrénoïde structuré. 

 FIG. 29. Prophase. On se rend très bien compte de la régularisation progressive du noyau par suite du gonflement 



prophasique. 

 Fig. 30. Mise au fuseau. 



Fig. 31, 32. Métaphases avec inclinaison en sens inverse des pôles du fuseau. 

 Fig. 33. Télophase. Division d'un des pôles du fuseau. 

 Fig. 34 à 39. Spermatogonies primitives de Bufo vulgaris. 



