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FlG. 34, 35. Noyaux au minimum de polymorphisme (vue d'ensemble). 



Fia. 36. Noyau au maximum de polymorphisme (coupe). On voit la sphère au centre des lobes du noyau. Canali- 

 cules nucléaires coupés transversalement. 



Fig. 37. Prophase au début. Persistance des nucléoles. 



FlG. 38. Gonies I après la division. Rotation des centres de près de 1800. 



Fig. 40 à 43. Gonies I chez Alytes obstetricans. 



Fia. 40. Noyau presque arrondi. Sphère dans une encoche du noyau. 



Fig. 41. Noyau au maximum de polymorphisme avec incisures. Anneau mitochondrial imparfait. 



Fia. 42. Prophase. 



Fia. 43. Aster. On ne voit pas entre les chromosomes de différences nettes. 



Fia. 44 et 47 à 50. Détail de divers lobes du noyau chez Bombinator (44) et Bufo (46 à 50) pour le canalicule nu- 

 cléaire et ses rapports avec le nucléole. 



Fig. 43. Nucléoles de Hyla (Les corps pyrénoïdes ont le même aspect). 



PLANCHE IV 



Gonies primitives chez les grenouilles. 



Fig. 51 à 73. Fixation et coloration de Flemming. FlG. 74 à 78. Fixation et coloration de Benda. 



Fig. 51 à 63. Rana esculenta. 65 à 73, Rana temporaria. 74 à 77, Rana esculenta. 78, Bufo vulgaris. 



Fia. 51, 52. 54 Gonies du type ordinaire de Rana esculenta. 



Fia. 53. Un corps pyrénoïde dégénéré. Fig 52, canalicule intranucléaire. 



Fig. 54. Noyau à nucléole très gros et vacuolaire. 



Fia. 55. Un petit noyau est isolé avec un gros nucléole. 



Fio. 57. Noyau au maximum de polymorphisme avec incisures. Lobe du noyau détaché et dégénéré. Nucléole 



excentrique. 

 FlG. 56. Nucléole excentrique repoussant la membrane nucléaire. 

 Fia. 58. Prophase. Nucléoles persistants. 

 Fig. 59. Prophase avancée, nucléoles disparus. 



Fig. 60. Métaphase (coupe axiale). Les chromosomes se séparent par leurs extrémités. 

 Fia. 61. Anaphase. 



Fia. 63. Télophase (partage irrégulier des corps pyrénoïdes). 



Fia. 68, 69, 70, 71, 72. Formes normales des noyaux chez Rana temporaria. Canalicules nucléaires. 

 Fia. 65, 66, 67. Noyaux très irréguliers et incisés ; en 67 amitose dégénérative. 

 Fia. 273. Prophase. 



Fio. 74 à 77. Mitochondries chez Rana esculenta. 

 FlG. 74, 77. Corps mitochondriaux compacts. 

 Fio. 75. Figure de dispersion des mitochondries. 



Fia. 76. Corps mitochondrial irrégulier et juxtanucléaire dans une cellule à noyau très polymorphe. 

 Fio. 78. Formations mitochondriales en halo chez Bufo. 



PLANCHE V 



Eléments anormaux. 



Fig. 79 à 83 et 86, 87, 93, 94. Evolution et dégénérescence oviforme des gonies primitives chez Rana esculenta. 

 Méthode de Flemming. (Les figures de cette planche sont très inégalement grossies. On a indiqué 

 à côté de chacune, en pointillé, le diamètre d'une spermatogonie normale). 



Fig. 79. Gonie à noyau très polymorphe et à sphère excentrique. La chromatine est disposée en série de grains, 

 on ne peut cependant assurer que cette cellule soit certainement vouée à l'évolution oviforme. 



Fig. 80, 81. Cellules en voie d'évolution oviforme, mais à peine hypertrophiées, filaments pointus dans le cyto- 

 plasme. 



Fig. 82. Cellule hypertrophiée à sphère hérissée de pointes. 



FlG. 83, 84. Cellules très hypertrophiées avec filaments pointus. Fig. 83, la cellule est envahie par des cellules 

 folliculeuses. En 83, les nucléoles et la chromatine ont la disposition caractéristique des œufs. A 

 côté de la fig. 83, une gonie I de taille normale pour montrer l'hypertrophie considérable. 



Fig. 86, 94, 95. Formation des filaments pointus aux dépens du corps pyrénoïde. 



Fig. 86. Le nucléole du noyau et le corps pyrénoïde se débitent tous deux en filaments pointus. 



Fig. 93. Cellule de structure oviforme à noyau encore très lobé. 



Fig. 94. Cellule avec sphère dédoublée. 



Fia. 97. Multiplication des centrioles. 



Fio. 88, 89, 91, 92. Gonies oviformes de Rana esculenta par la méthode de Benda. Dans la fig. 88 deux sphères. 

 Figures de division des mitochondries. 



