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leicht iiutzufindün. Aus allen diesen Gründen ist das Reagens liei mikrochemischen Untersuchungen 

 auf Hyoscyamin, Scopolamin und Atropin sehr zu empfehlen. Ich Inilie hei diesen Untersuchungen die 

 KrystuUe nur in der Nährschicht bokomnien, und zwar innerhidb der Zellen so gut wie überall. Ich 

 kann mich deshalb M. Elfstrand nicht anschliessen, wenn er in seiner Arbeit (1895, l'g. 121) sact: 

 „Erstens habe ich niemals mit irgend einem Fällungsreagens eine krystallinische Fällung in einer Zelle 

 erhalten, wenn auch die auf makrochemischeni Wege erhaltene Fällung in der Regel krystallinisch ist. 

 Dies gilt sicher für die meisten Alkaloidc. Nur ein so äusserst leicht krystallisierendes Alkaloid wie 

 Berberin dürfte eine Ausnahme von dieser Regel bilden." XI. Pikrinsäure (gesättigte, wässerige 

 Lösung) giebt in den Geweben keine Reaktion; wahrscheinhch ist die Empfindlichkeit des Reagens zu 

 schwach; es erzeugt mit den reinen Alkaloiden nur noch einen Niederschlag bis zu einer Verdünnung 

 von etwa 1:300. Xll. Phosphormolybdän- und Pho8])lior wolframsäure (l()-])roz. wässrg. 

 Lösung) trüben das ganze Bild, und weil ferner die Farbe und das sonstige Aussehen des weissgrauen 

 Niederschlags so wenig charakteristisch ist, lässt sich mit diesen beiden Reagentien die Lagerung der 

 Alkalüide nicht bestimmen. 



Wie ersichtlich, habe ich also nur mit den unter 1, II, VIII, IX, X aufgeführten Reagentien 

 guten Erfolg gehabt, und nur sie scheinen sich also für die hier in Betracht kommenden Alkaloide zu 

 eignen. Bei allen folgenden Untersuchungen habe ich ebenfalls nur mit den genannten Reagentien ein 

 gutes Resultat erhalten. Man sieht ferner, dass ich, in Uebereinstimmung mit anderen Autoren (Clautriau, 

 Molle), das Alkaloid bei Sem. Stramonii und Sem. Ilyoscyami ausschliesslich in der Zellschicht zwischen 

 der Epidermis und dem Endosperm gefunden habe. Zu demselben Resultat ist Clautriau beziiglicli der 

 Samen von Atropa Belladonna gelangt. 



Betrachtet man ganz junge, noch nicht fertig entwickelte Samen, die jedoch schon ein ganz 

 bedeutendes Endosperm besitzen, so findet man das Alkaloid im Integument, auch in dessen Epidermis 

 und in den Nucelluszellen ausserhalb des Embryosacks. Wie gezeigt, versehwindet also bei der weiteren 

 Entwicklung des Samens das Alkaloid völlig aus der Epidermis. 



Bei den Samenknospen findet man das Alkaloid nur in der äusseren Epidermis des Integuments 

 und in der innersten an den Embryosack angrenzenden Zellreihe. 



Es nimmt also im Laufe der Entwickelung des Samens zunächst die Menge der alkaloidführendeu 

 Zellen zu, um bei der Reife wieder etwas abzunehmen. 



C. Lagerung der Alkaloide im Fruchtknoten. 



Sehr viel Alkaloid fand ich in den beiden Epidermen der Fruchtknotenwand, sonst aber auch 

 Alkaloid überall in dem dazwischen liegenden Gewebe, sowie in den Placenten. 



D. Lagerung der Alkaloide im Perianth. 



Das Kelchblatt enthält Alkaloid in den Parenchymzellen, welche in der Nähe der Siebstränge 

 liegen. Dagegen erhielt ich, im Gegensatz zu P. Molle (1895, Pg. 12), weder beim Kelcliblatt noch beim 

 Kronen blatt einen Alkaloidniederschlag in der Epidermis. Auf einem Querschnitte durch die Kronen- 

 röhn; lassen sich die Alkaloide sehr leicht nachweis(m, und zwar in dem Parenchym, welches um die 

 Gefässe herum liegt. 



E. Lagerung der Alkaloide im Laubblatte. 



Bei älteren, völlig ausgewachsenen Blättern erhält man Alkaloidiiiederschläge in den Bündel- 

 strahlen der Leitbündel, im Siebstrangparenehym und oft, jedoch nicht immer, in den in der Nähe der 

 Siebstränge liegenden Parenchymzellen. In den Siebröhren und in den (ieleitzellen habe ich Alkaloid 

 nicht nachweisen können. In ganz jungen Blättern scheint der Alkaloidgehalt relativ grössei' zu sein 

 als in älteren, denn man findet hier das Alkaloid, ausser in den oben genannten Gewehepartien, fast 



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