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ich die Schnittfläche diircli ein Koni mit Gummi arabicum und lasse das Objekt eintrocknen. Ein 

 dünner Schnitt wird dann abgenommen, auf den Objekttriiger gebracht und Wasser hinzugesetzt, wo- 

 durch er sich aufrollt. Man kann nun leicht mit Kongorot färben, wodurch zu erkennen ist, dass 

 die hydrolysierten Stellen sehr schwach, die intakten intensiv fingiert werden. Man kann annehmen, 

 dass das Araban zunächst herausgelöst wird und das Xylan zurückbleibt. Auch durch Alkali-Alizarin 

 können die intakten Zellwände im Gerstenendosperm gefärbt werden. Interessant ist, dass im Mais- 

 endosperm die Membranen im Gegensatz zu denen des Gerstenendosperms durch Kongorot nur sehr 

 schwach gefärbt werden, nach Einwirkung der Diastase aber intensiv. Sie verhalten sich in dieser 

 Beziehung wie die verdickten Zellwände des Dattelkerns. Von der Diastase werden sie übrigens 

 schwerer angegriffen als wie die der Gerste. Sehr langsam wirkt das Enzym auch auf die Membranen 

 der Parenchymzellen in den Kotyledonen der Bohne ein. Bringt man Stücke derselben in Diastase- 

 lösung, so fallen nach längerer Zeit die Zellen durch Lösung der Mittellamelle auseinander. Dass die 

 Zellwände verändert sind, resp. dass ein Bestandteil herausgelöst ist, lässt sich hier nur durch die 

 Fuchsinfärbung erkennen : die intakte Membran wird gefärbt, die veränderte nicht. Sowohl Alkali- 

 Alizarin als auch Kongorot geben in beiden Fällen nur eine schwache oder auch keine Färbung. 



Ich richtete mein Augenmerk hauptsächlich darauf, ob ganz allgemein das Galactan resp. 

 Araban die Violettfärbung mit Alkali-Alizarin ergiebt. Die Zellhäute in den Parenchymzellen der 

 Kotyledonen von Phaseolus ergaben ein negatives Resultat. Dieselben bestehen nach E. Schulze aus 

 Faragalactoarahan. Indessen können die beiden Succharo-OoUoide chemisch oder physikalisch so ver- 

 bunden sein, dass der Farbstoft' auf sie nicht einwirken kann, verhalten sich doch die Endosperm- 

 Membranen zweier so nahe verwandter Arten wie Gerste und Mais gegen Kongorot sehr verschieden. 

 Nur die Zellhäute in der Samenschale der Ackerbohne, welche ebenfalls iiulackoi enthalten, färbten 

 sich schön violett. 



Ein besseres Ergebnis wurde erhalten, als ich gummiführende Gewebsteile mit Alkali-Alizarin 

 behandelte. Es ist längst bekannt, dass Gummi arabicum und Tragant durch Kochen mit verdünnter 

 Schwefel- oder Salzsäure Arabinose und durch Salpetersäure Schleimsäure liefern. Im ersteren Falle 

 ist ein hydrolytischer Vorgang eingetreten und die Substanzen, welche Arabinose resp. Galactose liefern, 

 sind als Arahin resp. Galactin zu bezeichnen. Ich will zunächst zeigen, dass man auch hier die Säure 

 durch ein Ferment ersetzen kann. Für den Versuch wähle ich den Tragant, da man diesen wohl 

 am sichersten als reines Naturprodukt erhalten kann. 



In zwei Kolben wurde je 1 g Tragant gegeben und 50 ccm Wasser hinzugesetzt. Nach 

 24 Stunden wurden in den einen Kolben 100 ccm reine Diastaselösung, in den andern 100 ccm Wasser 

 eingelassen. Als Antiseptikum diente Chloroform, Nach dem Unischütteln wurde die reduzierende 

 Wirkung in folgender Weise gemessen : von der Flüssigkeit wurden 5 ccm abgehoben und mit 25 ccm 

 Wasser verdünnt. 5 ccm dieser verdünnten Lösung reduzierten 0,1 ccm Fehlingsche Lösung. Nach 

 3 Tagen betrug die in derselben Weise ausgeführte Reduktion der mit Diastase versetzten Lösung 

 ^ 0,4 ccm Fehlingsche Lösung, nach 8 Tagen = 0,6 ccm Fehlingsche Lösung, nach 14 Tagen = 

 0,8 bis 0,9 ccm Fehlingsche Lösung. Die ohne Diastase angesetzte Tragantlösung veränderte sich 

 in dieser Zeit überhaupt nicht. 



Die beiden Versuchsflüssigkeiten, von denen wir die eine, welche Tragant und Diastaselösung 

 enthielt mit A, die andere, in welcher nur Tragant und Wasser vorhanden war, mit B bezeichnen 

 wollen, wurden mit Kongorot untersucht. In zwei Cylinder wurden je 50 ccm Kongorotlösung gegeben 

 und zu der einen 20 com von A, zu der anderen 20 ccm von B hinzugefügt. Aus der letzteren 



