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methoden versucht; in den gewöhnlichen Farbstofflösungen ver- 

 schwanden jedoch, wie zu erwarten war, die Harnkügelchen 

 völhg oder wurden doch sehr stark angegriffen. Dann wurden, 

 da die Kügelclien in absohitem Alkohol sich halten, Farbstoffe 

 in absolutem Alkohol oder auch in Alkohol-Chloroform-Eisessig 

 gelöst. Aber auch die sonst besten Kernfärbemittel bewirkten 

 in diesen Lösungen bei tage-, selbst wochenlangem Einwirken 

 keine Kernfärbung. Das ganze Präparat war diffus gleich- 

 massig gefärbt, von Kernen nichts zu sehen; es war durchaus 

 unbrauchbar. 



So musste schhesslich wieder auf die wässerigen Farbe- 

 lösungen zurückgegriffen und eine Methode gesucht werden, 

 die bei ausserordentlich kurzer Einwirkung eine brauchbare 

 Färbung lieferte, um den Kügelchen gleichsam nicht die Zeit 

 zu lassen, sich aufzulösen. Meinen Anforderungen genügend 

 erwies sich nach langen Versuchen allein die Hämatoxylinfärbung 

 nach Hei den hain (Beize: etwa 4*^/0 schwefelsaures Ei seuoxyd- 

 ammoniak) mit nachfolgender Eosinfärbung. Die Färbung wurde 

 folgendermassen gemacht: Der Objektträger mit den aufgeklebten 

 Schnitten wurde mit einer Pincette gefasst und dann schnell 

 hinter einander in die Flüssigkeiten nur eben hin eingetaucht, 

 aus dem absoluten Alkohol in 96 ^/ü, 70^/o, Wasser, Beize, Hämat- 

 oxylinlösung, Beize, Wasser, Alkohol 70*^/0, 96 "/o, Eosinlösung 

 in absolutem Alkohol, absoluten Alkohol, Xylol. 



Die alkoholische Eosinlösung wurde benutzt, um das Wasser 

 möglichst zu vermeiden. 



Die Färbung in der angegebenen Weise dauerte etwa 

 30 Sekunden. Das Ergebnis war sehr gut: deutliche Kern- 

 färbung, gute Protoplasmafärbung; die Harnkügelchen waren 

 wenig oder gar nicht angegriffen, die meisten wurden von dem 

 Zellprotoplasma eng umschlossen, ein sicheres Zeichen, dass sie 

 unverändert waren. Es fehlten auch die Polarisationskreuze, 

 die sonst bei der Auflösung der Kügelchen auftreten. 



