Untersuch, über d. Gruppe d. Bindesubstanzen. I. Hyalinknorpel. 705 



Fibrillen fein und dünn und ohne spezifische Färbung schwer 

 zu gewahren sind, liegt die Versuchung nahe, eine „Waben- 

 struktur 1 ) anzunehmen (z. B. in einem homogenen Kollagen). 

 Die Fig. 2 zeigt diese Tingibilitätsverhältnisse im Knorpel eines 

 grossen Kalbes, wo in der Zone IV beginnende Entwickelung 

 von Albumoidkörnchen stattfindet, und zeigt zugleich, dass das 

 Albumoid seinen Hauptsitz ausserhalb der stärker binde- 

 gewebshaltigen Zone III hat. Ich bemerke noch, dass die Unter- 

 suchung des überlebenden unveränderten Knorpel- 

 gewebes mit den hier besprochenen Verhältnissen 

 völlig übereinstimmt. 



Eine mehr isolierte Färbung des Albumoids im 

 Knorpel erhält man mit Methylviolett. Die Färbung, die 

 Hammar (84) angiebt, nämlich Methylviolett mit folgender 

 Differenzierung in Salzglycerin , um die Knorpelzellen darzu- 

 stellen, lässt sich hierzu anwenden. Ausserdem benütze ich oft 

 Methylviolett auf etwas abgeänderte Weise, indem ich die fixierten 

 (jedoch nicht celloidinhalti gen) Schnitte in einer wässerigen 

 Lösung von Methylviolett 5 B, 1 : 2,500 färbe (die Lösung sollte 

 am liebsten frisch zubereitet sein, darf aber jedenfalls nicht 

 viele Tage gestanden haben). Das Färben dauert ein paar Minuten 

 oder länger, wenn es notwendig ist; darauf spült man ab in 

 Wasser oder noch besser in 2° o— 10% Na Cl-Lösung, wobei die 

 Farbe sich nicht verändert oder extrahiert wird, während dies 

 beim Auswaschen in Aqn. destill, geschehen kann. Das Ab- 

 spülen in 2°/o Na Cl-Lösung hat den Vorteil, dass man die 

 Schnitte kürzere Zeit lang färben und die Färbung auf einer 

 Stufe fixieren kann, die für die Untersuchung geeignet ist. Man 

 untersucht in 2°/o Salzlösung oder in physiologischer Kochsalz- 

 lösung. 



i) Auch ohne diese Albumoideinlagerungen in die Grundsubstanz kann 

 ein kammerwerkartiger Bau der in der That fibrillierten Grundsubstanz simu- 

 liert werden. Hierüber später. 



