WERA DANTSCHAKOFF, 



vollkommenere Schnittserien als mit Paraffin zu erlangen und sie am Objekt- 

 träger anzukleben, ohne einen einzigen Schnitt dabei zu verlieren. Diese 

 Methode verdanken wir Rubaschkin (41). Ich habe an ihr einige Modi- 

 fikationen vorgenommen, über die ein besonderer kleiner Artikel in der Zeit- 

 schrift für wissenschaftliche Mikroskopie unhängst erschienen ist (7). 



Die Schnittdicke variierte zwischen 5 und 7,5 ^; das Celloidin wurde 

 stets durch Alkoholäther entfernt. 



Zur Färbung gebrauchte ich die Methoden, die heutzutage überhaupt 

 bei Blutuntersuchungen eine grosse Rolle spielen: Eosin-Azur- (Eos.Az) 

 Mischung nach N o c h 1 1), G i e m s a s Lösung (G) 2) und D o m i n i c i s (12) 

 Eosin-Orange-Toluidinblau-Mischung (D) 3). 



Für die Flächenpräparate der Keimscheiben und des Dottersackes wurde 

 ausschliesslich die D o m i n i c i - Färbung gebraucht; sie leistet hier ganz 

 Ausgezeichnetes, während die beiden anderen Niederschläge erzeugen. 



Während die gefärbten Celloidinschnittserien in allen Fällen sich als 

 äusserst dauerhaft erwiesen, haben die nach D o m i n i c i gefärbten Flächen- 

 präparate der Keimscheiben mit dem Gefässhof und Stücke der Dottersack- 

 wand leider eine sehr unangenehme Eigenschaft, — sie entfärben sich in 

 Balsam sehr rasch, und zum Ende der 2.-3. Woche behält das Präparat oft eine 

 nur ganz diffuse Eosinfärbung, während die basophilen Elemente ihre Blau- 

 färbung ganz einbüssen. Ich habe mich überzeugen können, dass dies vor- 

 nehmlich in solchen Flächenpräparaten, resp. an solchen Stellen derselben 

 geschieht, wo sich grosse mit Blut gefüllte Gefässe der Dottersackwand oder 

 im Entoderm grosse mit Eosin gefärbte Dottermassen befinden. Es ist des- 

 wegen ratsam, nach der Eosin-Orangefärlnmg das Präparat sehr gründlich 

 mit 60 Alkohol auszuwaschen und erst dann mit Toluidinblau nachzufärben. 

 Am besten ist es natürlich, die Stellen mit vielem Dotter und mit grossen 

 Gefässen aus der Dottersackwand ganz herauszuschneiden. 



Es erübrigt noch hervorzuheben, dass man für alle Präparate, die nach 

 den angegebenen Methoden gefärbt sind, unbedingt nur reinsten neutralen 

 Canadabalsam in Xylol purissimum gelöst gebrauchen darf, da die Färbung 

 sonst schon nach einigen Tagen verbleicht. 



1) 1 ccm einer 1 o/qq Lösung von Eosin w. g. wird mit 10 ccm Wasser 

 verdünnt und dann wird 1 ccm einer 1 '^/qq Lösung von Azur II hinzu- 

 gesetzt. Färbung 2—24 Stunden. 



2) Zwei Tropfen auf 1 ccm Wasser, Färbung ca. 2—4 Stunden. 



3) Zuerst wird in einer Lösung von 0,3 Orange G und 0,25 Eosin w. g. 

 in 50 ccm Wasser gefärbt; Färbungsdauer 10 Minuten bis 24 Stunden. Dann 

 Auswaschen in 60° Alkohol, Schnitte junger Embryonen 3—5 Sekunden, 

 älterer bis zu 3—5 Minuten. Es folgt Färbung in einer Lösung von 0,25 

 Toluidinblau in 50 ccm Wasser während V2— 5 Minuten. Dann Differenzierung 

 in 60" Alkohol, längere Zeit für jüngere Embryonen, deren Zellen überhaupt 

 eine viel ausgesprochenere Basophilie offenbaren, und kürzere Zeit für ältere 

 Embryonen. Es folgt dann in gewöhnlicher Weise absoluter Alkohol, Xylol 

 und neutraler, reinster Xylol-Balsam. 



