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sehen, wenn man einen Schnitt der Celloidinserie auf Glykogen 

 färbt und den folgenden einfach mit Hämatoxylin, man findet 

 dann im letzteren rosig geblähte Zellen, die mitten im matemen 

 Gewebe liegen und hier wohl die Langhanszellen einer Haft- 

 zotte darstellen, daneben dichtgefärbtes Syncytium; diese ge- 

 blähten Zellen sind dann nach der Methode Best gefärbt, 

 vollgepfropft von Glykogen, das bei der anderen Färbung die 

 anscheinend leeren Räume dicht ausfüllt (Taf. 50, Fig. 12). 



Die Syncytiummassen verhalten sich wesentlich anders. 

 Sie zeigen eine homogene gleichmässige Färbung mit Häma- 

 toxylin, intensiv blaue Kerne und blassbläuliches Protoplasma, 

 aber nirgends auch nur ein Tröpfchen Glykogen. Weder die 

 frei im intervillösen Raum schwimmenden, noch die auf dem 

 Blutwege verschleppten riesenzellenähnlichen Massen sind 

 glykogenhaltig. Auch das Syncytium, das als Deckschicht 

 den Langhanszellen der Zotten auflagert, bleibt frei von roten 

 Tröpfchen. 



Die Langhanszellen der Grundschicht bieten wieder ein 

 anderes Bild. Man glaubt zuerst, dass die Glykogentropfen 

 zwischen den einzelnen Zellen liegen, die Zellkerne wechseln 

 mit einem meist länglichrunden Tropfen ab. Bei genauer Be- 

 trachtung kommt man aber zu der sicheren Überzeugung, dass 

 das Glykogen intracellulär liegt und intracellulär aufgespeichert 

 ist. Unterhalb der Langhansschicht findet sich nun meist in 

 feineren Tröpfchen ziemlich reichlich das Glykogen und weiter- 

 hin zerstreut im Chorionbindegewebe. Hier ist es teilweise 

 ebenfalls an die Kerne der spindeligen Zellen angegliedert 

 oder liegt im Verlauf der zarten Ausläufer der Zellen oder 

 frei in der homogenen Zwischensubstanz des Mesoblastgewebes. 



Über den Glykogengehalt der Fötalanlage stehen mir keine 

 Beobachtungen zur Verfügung; auch im Blut habe ich kein 

 freies Glykogen nachweisen können. 



Vergleichsweise habe ich dann noch zwei geplatzte Tubar- 



