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in situ in einer 4 — lOo/oigen wässerigen Formaldehydlösiuig 

 gehärtet wurden. 



Darauf wurden die Musculi gastrocnemii und solei ab- 

 präpariert und für die histologische Untersuchung in Stückchen 

 von verschiedener Grösse geschnitten, und zwar so, dass ich 

 mit einem Rasiermesser zunächst dünne Schnitte von den 

 Muskeln anfertigte, bis die Injektionsmasse zum Vorscheni 

 kam, dann schnitt ich ein grösseres Stückchen ab, und so 

 fort. Die Stückchen, welche die Injektionsmasse im Muskel- 

 gewebe enthielten (etwa 60 in Zahl), wurden dann in Celloidin 

 eingebettet, und Schnitte von 3 — 4: — 5 — 600 |li daraus ange- 

 fertigt, indem ich stets den Schnitt dort am dicksten machte, 

 wo ich mit unbewaffnetem Auge die Injektionsmasse im Ge- 

 webe so verteilt vorfand, dass ein Befund von Lymphgefässen 

 zu erwarten war. Die Serien wurden in Glycerin aufgehellt, 

 und die Schnitte einzehveise unter dem Mikroskop durch- 

 mustert. Die schönsten Schnitte wurden herausgesucht, in 

 Alkohol von steigender Konzentration und zum Schluss in 

 mehrmals gewechseltem Alkohol entwässert, in Xylol aufgehellt 

 und in Damarharz eingeschlossen. Ich habe im allgemeinen 

 keine Kernfärbung benutzt, weil an so dicken Schnitten dadurch 

 nur erzielt wird, dass sich das Bild verschleiert, und man 

 mit gehöriger Abbiendung leicht erkennt, ob man sich im 

 Sehnengewebe oder im quergestreiften Muskelgewebe befindet. 

 Dagegen ist eine zarte Eosinfärbung mit guter Differenzierung 

 besonders für dünnere Schnitte sehr empfehlenswert. 



Um in jedem einzelnen Schnitte möglichst viele Lymph- 

 gefässe zu erhalten, habe ich die Muskeln hauptsächlich im 

 Frontalplan, möglichst in der Faserrichtung, geschnitten, da 

 ich eine Gruppierung der Lymphgefässe um die Blutgefässe 

 erwartete und ich auf dieser Weise die grösste Anzahl in der 

 Längsrichtung treffen würde. 



