Technische Erläuterungen. 293 



oder Kork zwischen die vollständig klaffenden Schalenränder. Sobald an dem Weichkörper 

 die halbe oder ganze Schale noch haftet, muss die Fixirungsflüssigkeit eine freie Säure 

 enthalten. Für viele anatomische Untersuchungen genügt schon das Einlegen in Alkohol 

 von 70%, dem zwei und mehr Procent Salpetersäure zugesetzt ist. Sehr gute Dienste 

 leistet auch Chromessigsäure. Vor allem aber ist das starke FLEMMiNc'sche Chromessigosmium- 

 gemisch und P. Mayer's Pikrinsalpetersäure zu empfehlen. Diese beiden Fixirungsflüssigkeiten 

 leisten bei histologischen Untersuchungen ausgezeichnete Dienste. 



Bei allen den eben genannten Gemischen ist die Säure in 12 bis höchstens 24 Stunden 

 verbraucht. Von ganzen Muscheln lassen sich stets nur kleine Exemplare einigermaassen gut 

 fixiren. Zum Stadium der feineren histologischen Verhältnisse genügen die Schnittserien durch 

 ganze Muscheln keineswegs, immer sind die Organe, die am Schalenoberrand d. h. unter dem 

 Ligament liegen, und die central gelegenen, die von anderen Organen eingeschlossen werden, 

 wesentlich schlechter conservirt als die übrigen, zu denen die Reagentien direct gelangen. 

 Zum Studium des feineren histologischen Baues sind kleinere Stücke von allen Organen zu 

 fixiren, die sowohl von narcotisirten als auch von nicht narcotisirten Thieren herrühren. In 

 diesem Falle leistet Sublimat mit und ohne Zusatz von Eisessig sehr gute Dienste. Die 

 Cilien werden sehr gut erhalten, wenn der Weichkörper oder einzelne Organe erst kurze 

 Zeit (wenige Minuten) in eine 1 0% ige Formollösung in See wasser und dann in die betreffende 

 definitive Fixirungsflüssigkeit gebracht werden. 



Ueber das Färben will ich mich auch sehr kurz fassen. Die besten Resultate er- 

 zielt man nur dann, wenn erst die fertigen Schnitte gefärbt werden. Diese Methode wurde 

 fast ausschliesslich angewandt. Zum Tingiren der Kerne diente meist Mayer's Hämalaun, das 

 allerdings auch die Schleimdrüsen mit ungeformtem Inhalte, die sogenannten Mucindrüsen, 

 färbt, aber sonst in seiner Eigenschaft als Kernfarbstoff von keinem anderen nur annähernd 

 erreicht wird. Anfangs wurde noch eine grosse Anzahl von Anilinfarbstofl'en zum Zwecke 

 bestimmter Differenzirungen angewendet; es würde zu weit führen, hier näher auf ihre Brauch- 

 barkeit und Nützlichkeit einzugehen: am meisten leistet immer noch zur allgemeinen Orien- 

 tirung BioNDi's Dreifarbengemisch. Hat man sich jedoch gut eingearbeitet in die Histologie 

 der Muscheln, so kommt man mit Hämalaun als Kernfarbstoff und Eosin als Plasma- 

 farbstoff aus. Je nachdem man das Eosin, das wasserlösliche wie das in Alkohol lösliche, in 

 schwächerer oder stärkerer Lösung mit oder ohne Zusatz von ganz wenig Essigsäure anwendet, 

 bekommt man alle möglichen Diff'erenzirungen. 



Bei diesen Färbeversuchen mit Eosin in Verbindung mit Essigsäure gelangte ich auch 

 zu meiner Methode, auf Schnitten die feinsten Vertheilungen der Nervenfasern und 

 die Primitivtibrillen darzustellen. 



Eine exacte Vorschrift dieser Methode kann ich zur Zeit noch nicht geben. Ich will 

 nur den Weg angeben, der zu guten Resultaten führte. Nachdem die Schnitte auf dem 

 Objectträger mit Hämalaun gefärbt sind, werden sie mit einer Schicht von destillirtem Wasser 

 bedeckt, dem 2 Tropfen Essigsäure zugesetzt wird. Nach einigen Minuten wird diese sehr 



