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L'étude de l'oviducte surtout nous a opposé d'assez sérieuses difficul- 

 tés pratiques. 



Aussitôt après la dissection, une partie de l'oviducte était examinée à 

 frais, dissociée sur porte-objets, ou bien dans le sérum. Pour fixer les objets 

 ainsi préparés, l'acide osmique et de préférence l'alcool sulfureux en vapeur 

 nous ont donné les meilleurs résultats. Comme colorant le vert de méthyle 

 nous a bien réussi. Les oviductes de triton sont très faciles à dissocier; il 

 suffit de les étaler, après les avoir fendus au moyen d'un fin scalpel, et de 

 racler légèrement la surface pour obtenir une belle dissociation des cellules 

 épithéliales. Les oviductes de crapaud et de grenouille sont beaucoup plus 

 difficiles, parce que les tubules sont tous enchevêtrés et retenus parla tunique 

 conjonctive. L'alcool permet cependant de les dissocier, après trois jours 

 d'action; mais le moyen le plus rapide est un mélange d'une solution de 

 chlorate de potasse et d'acide nitrique, à parties égales; il n'y a guère de 

 tissus épithéliaux qui résistent à ce traitement. Pour les matériaux à con- 

 server, nous avons employé comme fixateur le sublimé corrosif, suivant la 

 formule de Gilson. 



Les oviductes vidés d'enclaves se laissent très bien imprégner et couper 

 dans la paraffine, mais ils deviennent de plus en plus revèches à mesure 

 qu'ils grossissent, c'est-à-dire qu'ils se gorgent de mucine. 



Ce qui est encore plus difficile à imprégner, se sont les oviductes con- 

 tenant des œufs chargés d'albumine. On se trouve en effet en présence de 

 trois éléments de consistance différente, se durcissant tous comme de la 

 pierre dans l'alcool absolu. Voici la méthode qui nous a le mieux réussi. 



On déshydrate à l'alcool absolu jusqu'à ce que l'objet soit devenu d'un 

 blanc mat, on le plonge dans un mélange d'alcool absolu et de chloroforme, 

 à parties égales; l'objet surnage, mais au bout de 10 -15 minutes environ, 

 il descend au fond; alors il est à peu près bien imprégné du mélange. 



On l'y laisse encore cinq minutes, puis on le porte dans le chloroforme, 

 où on le laisse au minimum une heure. Au bout de ce temps, il a perdu sa 

 couleur blanche et s'est notablement éclairci. Ensuite on passe directement 

 à la paraffine. 



Comme colorants, nous avons fait usage des carmins : aluné, picro- 

 aluné, alcoolique de Mayer, et de l'hématoxyline mélangée d'un peu de 

 fuchsine. 



La vésuvinc comme colorant protoplasmatique est excellente. 



