l'axe organique du noyau 181 



En étudiant, dans ces derniers temps, la structure histologique du 

 tube intestinal des larves de quelques diptères, nous avons eu la bonne 

 fortune de rencontrer des noyaux où l'orientation de l'élément nucléinien 

 se présente d'une manière plus évidente encore, peut-être, que dans les 

 exemples cités par Rabl et Carnoy. Cette disposition est toute différente de 

 celle observée par Rabl dans les noyaux de la salamandre. La partie 

 chromatique est orientée non par rapport à un pôle, mais par rapport à un 

 axe absolument comme dans les noyaux étudiés par Carnoy. Mais, le 

 filament nucléinien n'est pas continu : on trouve dans ces noyaux un 

 nombre variable de tronçons distincts. L'élément chromatique est d'ailleurs 

 un véritable boyau nucléinien dans le sens de Carnoy, c'est-à-dire qu'il est 

 formé d'un étui plastinien dans lequel se trouvent des plaques de nucléine. 

 Il est, en effet, strié dans le sens transversal. 



Nous avons rencontré ces noyaux dans les cellules de deux glandes 

 annexes du tube intestinal de la larve d'un diptère némocère, le Ptycoptera 

 contaminata. Ces glandes débouchent dans l'intestin un peu au-dessus des 

 tubes de Malpighi, entre l'intestin moyen et l'intestin terminal. Ce sont des 

 glandes volumineuses d'environ 3 centimètres de longueur et de 1 à 

 2 millimètres de largeur. Elles ont un aspect laiteux et sont toujours rem- 

 plies d'une matière blanchâtre qui s'écoule à la moindre lésion de la paroi 

 glandulaire. En publiant prochainement les résultats de nos recherches sur 

 la structure histologique de l'appareil digestif de cette larve, nous tâcherons 

 d'élucider la fonction physiologique de ces glandes. La paroi glandulaire 

 est formée d'une seule couche de cellules volumineuses, polygonales, visi- 

 bles à l'œil nu, de près de 1 millimètre de diamètre(i). Pour étudier ces cel- 

 lules et leur noyau, il suffit d'introduire la lame d'un fin scalpel à une extré- 

 mité de la glande, de l'ouvrir alors sur toute sa longueur et d'étaler la paroi 

 glandulaire sur un porte-objets. On comprend aisément que, vu l'extrême 

 délicatesse de cette paroi glandulaire, toutes ces manipulations doivent se 

 faire sous l'eau. Pour ne pas altérer les cellules nous avons toujours employé 

 de l'eau alcoolisée. Lorsque la paroi glandulaire adhère légèremeut au 

 porte-objets on place le tout dans un liquide fixateur. Nous nous sommes 

 toujours servi soit de l'alcool acétique, qui nous a rendu de si bons services 

 dans nos recherches sur les œufs d'Ascaris megalocephala (2), soit de l'alcool 



{11 Nous avons mesuré deux de ces cellules prises au hasard : l'une mesurait g5g p dans un 

 sens et 823 |J- dans l'autre, la seconde avait 781 |-i suivant son grand axe et 479 \>- suivant son petit axe. 



(2) A. Van Gehuchten : L'alcool acétique comme fixateur des œufs d'Ascaris megalocephala' 

 Anatomischer Anzeiger, III. Jahrg., n° 8, p. 237 — 240, 1888. 



