92 Hillhouse, Intercellularer Zusammenhang von Protoplasten. 



castanuni (3), Salisburia adiantifolia , Populus angulata (3), Quercus 

 pedunculata (3), Acer Pseudoplatanus (3), Carpinus Betulus, Catalpa 

 bignonioides, Ficus Carica, Ulmus carapestris (2), Salix Caprea, Pinus 

 silvestiis, Cytisiis Laburnum (3), Taxus baccata , Hex Aquifolium (3), 

 Rhododendron ponticum, Cydonia Japonica , Ruscus racemosus, Hedera 

 Helix, Viscum album (2), Prunus Laurocerasus (3), Syringa vulgaris (2), 

 Fagus asplenifolia. Die Zahlen in Klammern geben die Anzahl der 

 zu verschiedenen Zeiten angestellten Untersuchungen an. 



Die Pflanzentheile, welche meine Aufmerksamkeit auf sich lenkten, 

 waren die Rinde und die Blattbasis. Gemäss den Untersuchungen, die 

 ich im October beim Laubabfall über die Ableitung der Nährstoffe aus 

 dem Blatte anstellte, hatte ich gefunden, dass die Blattbasis sich haupt- 

 sächlich aus Zellen mit tief getüpfelten Wänden aufbaut. 



Die so erlangten Resultate wurden einer besonderen Publication 

 werth gehalten, zumal da sie keine directe Beziehung zu meiner Haupt- 

 arbeit aufwiesen. Bei meinen ersten Präparaten hatte ich die wohl- 

 bekannte Jod-Schwefelsäure-Methode angewandt , aber ich vertauschte 

 sie nach und nach, um womöglich haltbare Präparate zu erzielen, mit 

 der folgenden : Möglichst dünne Radial- und Tangentialschnitte werden 

 entweder von frischem Material mit einem Rasirmesser, das mit einer 

 Schicht von absolutem Alkohol bedeckt ist, oder von Material, das 

 einige Tage in absolutem Alkohol gelegen hat, angefertigt. (Aus 

 Gründen, die wahrscheinlich mit der weiter unten bemerkten, hart- 

 näckigen Adhäsion des Protoplasmas in den Tüpfeln zusammenhängen, 

 geht die Contraction nicht so leicht wie gewöhnlich von statten.) Die 

 ausgesuchten Schnitte werden zunächst mit verdünnter Schwefelsäure 

 behandelt und einige Minuten darauf mit concentrirter , welche , vor 

 Staub und zu grosser Abschwächung durch Feuchtigkeitsabsorption aus 

 der Luft geschützt, 20 bis 48 Stunden einwirken darf. Die Säure 

 wird dann mit einer Pipette sorgfältig aufgesogen und das Präparat 

 öfters mit destillirtem Wasser ausgewaschen. Alsdann setzt man einen 

 Tropfen Ammoniak-Carmin zu dem Präparate hinzu , bis es eine tief 

 rothe Farbe erhält. Nach wiederholtem Auswaschen schliesst man es 

 in Glycerin ein, ohne bei all diesen Operationen die Schnitte von dem 

 Objectträger, auf den sie anfangs gelegt, zu entfernen. Bei den ersten 

 Präparaten bedeckte ich das Object mit einem dünnen Deckglas während 

 der Wirkung der Säure, aber da dies das Auswaschen viel schwieriger 

 macht , und die Bewegung des Deckgläschens das Präparat gefährdet 

 und gewöhnlich die Bildung eines falschen Protoplasmanetzwerks (das 

 indessen leicht von einem natürlichen sich unterscheiden lässt) hervor- 

 ruft, so verliess ich diese Methode und bedeckte infolge dessen nicht 

 eher das Präparat, bis es für die Untersuchung ganz fertig gestellt war. 



Durch diese Methode löst sich die gesammte Zellwandung fort. 

 Die Intercellularsubstanz („Mittellamelle") verschwindet oft ebenfalls 

 vollständig, wenn auch ihre Lage zuweilen durch ein sehr feines von 

 dem färbenden Reagens blassroth gefärbtes Netzwerk angedeutet erscheint. 

 Meine ersten gelungenen Präparate hatte ich von einem Radialschnitt 

 durch das Blattgelenk von Prunus Laurocerasus (Fig. 1) erhalten und 

 da diese Pflanze ein gutes Object für das Studium des protoplasma- 

 tischen Zusammenhangs der benachbarten Zellen abgibt , so will ich 



