MONOBEACHIUM PARASITICUM MÉRÉJK. 309 



Fig. 4. Jeune nématocyste (Zeiss. F., 4). 



Fig. 5. Nématocyste avec le filament. 



Fig. G. Coupe longitudinale de la tête d'un pseudonématopliore 



(Hart. IV, lOim). a, cellules de soutien; h, voir la fig. 3; 



c, anneau des cellules glandulaires. 

 Fig. 7. Coupe verticale de l'hypostome (Zeiss. C, 5). a, cellules 



glandulaires endoderraiques. 

 Fig. 8. Coupe longitudinale de la base du tentacule (Zeiss. C, 5). a et 



h, inclusions dans les cellules endodermiques ; c, parois 



des cellules du tissu axial; d ^ axe protoplasmique du 



tentacule. 

 Fig. 9. Coupe transversale du tentacule (Zeiss, C, 4). 

 Fig. 10. Partie d'une coupe verticale d'une méduse (Zeiss. C. 4). 



a, une cellule sous-épitliéliale; h, amas de cellules à la 



base d'un tentacule. 

 Fig. 13. Partie d'une coupe horizontale d'une méduse (Zeiss. A., 4), 



Voir la figure précédente. 

 Fig. 17. No3^au d'un œuf (Zeiss. E., 5). dir, granules de chromatine; 



nd, nucléole. 

 Fig. 20. Une inclusion dans une cellule de l'hydrorliize. 



PLANCHE IX. 



Fig. 11. Coupe transversale de l'épithélium ventral d'un canal 



radiaire (O). 

 Fig. 12. Coupe longitudinale de l'épithélium ventral d'un canal 



radiaire (<^) Im. lamelle soutien (membrane propre). 

 Fig. 14. Coupe verticale du manubrium de la méduse (Zeiss. C. 4). 

 Fig. 15. Coupe longitudinale d'un canal radiaire (+). 

 Fig. 16. Spermatoblaste. 

 Fig. 18 et 19. Cellules ovulaires à divers degi'és de développement. 



(Zeiss. E.. 5.) 

 Fig. 21. Tête d'un spermatozoïde presque mûr. (Seibert, 3, V.) 



