33'2 Maurice HENSEVAL 



Comme colorant, nous avons employé le paracarmin, le carmin aluné 

 et l'hématoxyline, ainsi que divers colorants protoplasmatiques. 



Déshydratation, Nous déshydratons progressivement nos pièces en 

 passant par une série intermédiaire d'alcools. Nous consacrons beaucoup 

 de temps à cette opération : les objets restent 24 heures dans l'alcool absolu. 



Enrobage. Par l'enrobage à la paraffine simple, nous ne sommes jamais 

 parvenu à couper la tête des phryganes. 



Nous avons dû recourir à la méthode combinée du collodion et de la 

 paraffine. 



Nous laissons séjourner nos pièces dans un collodion très liquide pen- 

 dant 3 semaines. Dans le but d'accélérer cette opération, nous plaçons sou- 

 vent nos pièces en flacon fermé dans une étuve à 50 . Le bouchon est fixé à 

 l'aide d'une ficelle qui l'empêche de céder à la pression qui se développe. 



La pénétration se fait plus rapidement dans ces conditions. 



Nous laissons toujours évaporer le collodion jusqu'à ce qu'il constitue 

 une masse très épaisse. 



Ensuite, nous débarrassons les pièces de leur excès de collodion et nous 

 les jetons dans le chloroforme pour les durcir. 



Cette dernière opération demande toujours au moins une heure. 



Après cela, nous plaçons nos pièces quelque temps dans la paraffine, 

 un quart d'heure suffit, et nous coupons. 



Les coupes sont alors montées soit dans le baume de canada, soit dans 

 la glycérine. 



Pour l'étude cytologique, nous avons eu recours tantôt à des coupes 

 microtomiques fines montées dans la glycérine, tantôt à des dissociations. 



II. DESCRIPTION DES GLANDES. 



Nous avons jusqu'ici étudié les glandes de Gilson dans les six espèces 

 que voici : 



Phryganea grandis. 

 Un phryganide non déterminé. 

 Limnophilits rhonibicus. 

 « flaincornis. 



y extricatus. 



Anabolia nervosa. 



