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Le chlorure d'or et le nitrate d'argent que nous avons appliqués aussi 

 ne nous ont pas donné de résultats particuliers. 



Nous avons enrobé le plus souvent à la paraffine. Cependant, toujours 

 dans un but de contrôle, nous avons aussi fait usage du collodion. Les 

 coupes sont dans ce cas plus épaisses, mais on y trouve toujours des lam- 

 beaux très fins. 



3" Les colorants que nous avons appliqués sont nombreux. Les divers 

 carmins nous ont peu servi. Leur usage est plus profitable à l'étude histo- 

 logique qu'à l'étude cellulaire des téguments. L'éosine, la safranine, le brun 

 Bismarck donnent des résultats médiocres. 



L'iode dissout dans l'iodure potassique est un excellent colorant, ainsi 

 que l'ont fait remarquer plusieurs observateurs des ponts intercellulaires. 

 Il colore toujours très nettement, mais d'une teinte qui absorbe peu de 

 lumière; il a l'avantage de se laisser extraire plus facilement de la masse 

 de glycogène que des ponts; ce qui permet de l'appliquer même aux cellules 

 embryonnaires gorgées de cet hydrate de carbone. 



Le bleu de méthylène est un colorant précieux. Dilué il demande au 

 minimum une quinzaine de minutes d'action. Son emploi s'impose chaque 

 fois que les coupes sont forcément un peu épaisses, car il est le meilleur des 

 colorants nets et à faible teinte. 



L'hématoxyline sert de colorant à teinte foncée. On ne peut s'en servir 

 quand les coupes ne sont pas fines. Mais il faut y recourir pour analyser un 

 réticulum douteux sur les coupes minces; il présente alors toutes les qualités 

 désirables, surtout après la fixation aux sels de chrome, la meilleure pour 

 notre objet. Nous avons fait sur nos préparations mêmes le mélange de la 

 solution alcoolique d'hématoxyline avec l'eau alunée. La teinte noircit 

 ultérieurement, comme le dit Bolles-lee; mais ce phénomène rend les 

 images plus nettes encore, puisque la coupe est fine et que le détail à exa- 

 miner se colore seul. 



Il est important de savoir enlever le glycogène, tout en évitant de 

 ratatiner les cellules. A cette fin, la potasse et l'acide chlorhydrique dilués 

 doivent être écartés; ils ont déjà fort altéré la cellule alors qu'il y reste 

 encore beaucoup de glycogène. L'acide sulfurique assez concentré, 20 à 40 "/o, 

 à froid, pendant 24 heures, le ferment de la salive en 24 heures, la solution 

 pepsinique avec l'acide chlorhydrique à 2 7oo, aussi pendant 24 heures, nous 

 ont bien réussi. 



