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Nous fixons, pendant deux heures, dans le picrate d'ammoniaque, et 

 nous conservons la rétine dans le mélange de picrate amnionique et de 

 glycérine. Un séjour de 24 heures dans le liquide fixateur, ainsi que cela 

 est conseillé par Dogiel, nous semble peu recommandable, parce que la 

 rétine se gonfle excessivement et que la coloration pâlit plus ou moins. 



Tout récemment, Apathy(i) a proposé comme substance conservatrice 

 une solution sirupeuse de gomme arabique et de sucre. Nous l'avons der- 

 nièrement essayée avec des résultats assez satisfaisants. 



On peut aussi transformer une préparation ordinaire, fixée au picrate 

 d'ammoniaque, enune préparation absolument inaltérable, montée au baume 

 sec ou dans la résine d'AMMAR dissoute danslexylol. On commence par placer 

 la pièce sur un porte-objets que l'on maintient chauffé au moyen de l'étuve, 

 puis on laisse tomber sur la préparation une ou deux gouttes d'une solution 

 concentrée de gélatine transparente (gélatine 2, eau 5, solution saturée de 

 picrate d'ammoniaque 2 ou 3 gouttes), qui doit rester liquide durant 4 ou 5 

 minutes afin de faciliter la pénétration de la gélatine dans l'épaisseur du 

 tissu. Ensuite, on couvre la pièce avec une lamelle en exerçant une faible 

 pression afin d'étendre ses rides et d'empêcher son ratatinement; finale- 

 ment, après refroidissement, on enlève le couvre-objets auquel la préparation 

 reste généralement adhérente, on laisse sécher à l'air libre, et on monte 

 sur porte-objets enduit de baume ou de résine d'ÂMMAR dissoute au xylol. Le 

 tissu devient alors très transparent, et la coloration des cellules se conserve 

 très fidèlement. 



Cependant les couches delà rétine desséchée se raccourcissent beaucoup, 

 et il est souvent difficile de déterminer le plan où résident les éléments 

 imprégnés. C'est pour cela que nous n'employons ce procédé de conser- 

 vation que pour les préparations offrant un seul plan d'éléments colorés. 

 D'ailleurs, on obtient encore de meilleurs résultats sur les auti-es tissus : 

 terminaisons nerveuses dans la cornée, vessie de la grenouille, fibres mus- 

 culaires striées, etc.). 



La méthode rapide de Golgi, si précieuse par la netteté de ses révéla- 

 tions, est un peu inconstante sur les petites rétines des poissons, des rep- 

 tiles et des batraciens. En général, on peut affirmer que plus la rétine est 

 mince, plus il est difficile d'obtenir de bonnes imprégnations. C'est pourquoi 

 nous devons choisir, parmi les animaux de même genre ou de même fa- 



(1) Apathy : Behandhing des Kervensy stems fur histologische Zwecke; Zeitschr. fur wissenschaftliche 

 Mikroskopie, Bd IX, H. I, 1S92. 



