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assez grand nombre dans le testicule de la larve au stade instar et, dans 

 celui de l'adulte, ils envahissent presque toute la moitié dorsale de la glande. 



dire de plus. Quant aux mélang-es mercuriques, après avoir constaté qu'ils sont peu favorables pour 

 ce genre de matériel, nous nous sommes imposé de bonne heure la régie de les exclure. 



Il va sans dire que Tcnsemble des manipulations doit être mené lestement et que l'on doit éviter 

 en particulier un séjour trop prolongé dans une paraffine à point de fusion un peu élevé. 



Deux méthodes de coloration, parmi celles que nous avons employées, nous ont donné les meil- 

 leurs résultats : 



i) Triple coluration fiichsi-indigo-picriqiie de Cjjal. Voici, avec la formule du mélange telle que 

 nous l'avons empruntée au remarquable Traité d'histologie de cet auteur (C.\j.\l, 97), la manière dont 

 nous Tavons appliquée : 



1° Surcoloration des coupes dans une solution saturée de magenta ; 



2° Rinçage dans une grande quantité d'eau, tant que les coupes cèdent du colorant ; 



30 Immersion dans une solution de : eau saturée d'acide picrique 100, carmin d'indigo o,25; 

 cinq minutes environ; 



4° Immersion momentanée dans de l'eau aiguisée d'acide acétique (peut souvent être omise sans 

 préjudice pour le résultat); 



5° Décoloration ménagée par l'alcool absolu ; on doit s'arrêter quand les coupes prennent une 

 teinte gris d'acier par réflexion, rose par transparence; 



6" Déshydratation rapide par Talcool absolu et une essence, telle que la bergamote, que l'on 

 élimine avec avantage par le xylène avant le montage au baume, 



Nous dirions volontiers de cette méthode appliquée à des objets extrêmement variés ce que l'au- 

 teur en dit en se limitant aux tissus conjonctifs et épithéliaux, savoir que : « es este sin disputa 

 el metodo mas bello que se conoce para tenir todos los organos que contienen epitelios y trama 

 conectiva n 



Impossible de décrire toutes les teintes que Ton obtient sur une coupe un peu hétérogène. 

 Pour ce qui est de notre objet, les parties acidophiles (nucléoles et nucléine en mouvement) sont 

 colorées en rouge feu, les parties basophiles prenant une teinte variant du gris au bleu de ciel. 



2) Double coloration par' IHeidenhain et le crystallviolett. Nous avons employé, avec les résul- 

 tats ordinaires, la méthode classique d'HciDENHAiN. Mais s'il s'agit spécialement de faire ressortir 

 des détails protoplasmiques, ou les figures délicates de la prophase, nous avons trouvé beaucoup 

 d'avantage à modifier cette méthode d'après une communication verbale de RI. le professeur Henneguv : 



1° Mener les coupes jusqu'à la décoloration inclusivement suivant le procédé ordinaire; les traiter 

 alors à chaud jusqu'à faible dégagement de vapeur par une solution de crystallviolett dans l'eau 

 anilinée et l'alcool très légèrement acidulé par une trace d'HCI; 



2° Rincer à l'eau ; 



3" Décolorer par Talcool absolu (nous avons préféré Taloool à 96°, qui extrait plus rapidement 

 le colorant) ; 



40 Compléter la déshydratation par Talcool absolu, puis par un mélange à parties égales de 

 xylène et d'aniline, qui tolère un peu d'eau et éclaircit parfaitement; 



5° Éliminer ce mélange par le xylène et monter au baume. 



Notons que le mélange xylène-aniline peut être employé avec beaucoup d'avantage après le Cajal, 

 comme après I'Heidenhain simple. On se trouve bien d'employer un mélange ayant servi à plusieurs 

 déshydratations, car il laisse alors dans les coupes une teinte discrète qui dépend de sa teneur en 

 matière colorante que lui ont cédée, les préparations antérieures. 



Il est bien entendu que les coupes ne peuvent être explorées avec fruit que dans de très bonnes 

 conditions optiques, — objectif apochromatique i,3o et parfait éclairage; — nous nous trouvons très 

 bien de l'emploi d'un bec à acétylène. 



