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afin de rendre plus distinctes les figures caryocinétiques, toujours si petites 

 et si difficiles à analyser. En général, leurs détails se marquent mieux 

 dans les milieux aqueux, mais l'emploi de ces derniers avec les objets durcis 

 est de médiocre utilité lorsqu'on a recours à la méthode suivante. 



b) On se tromperait grandement en effet, si l'on croyait pouvoir élucider 

 tous les points de la caryocinèse des arthropodes en pratiquant les coupes 

 les plus fines à travers les cœcums testiculaires, car il est de toute nécessité 

 de recourir à la dissociation des objets vivants, soit à sec en les humectant 

 avec l'haleine, soit dans un liquide réactif. 



Nous avons procédé comme il a été dit dans la Biologie, p. ni, 114 et 

 144. Le testicule extrait de l'animal vivant est débité en tronçons que l'on 

 place chacun sur un porte-objets. En promenant sur eux le dos d'un scalpel 

 ou, au besoin (1), en les dilacérant délicatement, on en fait sortir les cystes 

 ou les cellules intactes dans leur milieu naturel. On peut aussi pratiquer 

 l'opération dans une goutte minime de vert de méthyle, ou bien ajouter ce 

 réactif après la dissociation. La préparation colorée est ensuite soumise 

 pendant 10 à 20 minutes (2) aux vapeurs d'acide osmique en solution à 2 "/o- 

 Après y avoir déposé une goutte de la solution de Ripart et Petit ou d'un 

 autre médium, on procède à son examen. Pour la conserver et la transformer 

 en préparation permanente, il n'y a plus qu'à la luter (4). 



On peut remplacer dans le traitement précédent l'acide osmique par 

 l'acide sulfureux dissous dans l'alcool; de nombreux essais nous ont appris, 

 en effet, que ce gaz est un excellent fixateur du noyau (4). La préparation, 

 dissociée sans réactif, est renversée pendant 3 à 5 secondes seulement (le 

 temps de compter jusqu'à vingt) sur le goulot d'un flacon contenant la dis- 

 solution. Avant de procéder à la coloration, il est nécessaire d'enlever jusqu'à 

 la dernière trace de l'acide par des lavages soignés, car il décompose le vert de 

 méth5de. Sur les préparations bien faites, la coloration de l'élément nucléinien 

 est aussi nette et aussi franche qu'en usant de l'acide osmique. Néanmoins 

 nous nous sommes servi de préférence de la première méthode. Quant à la 

 fixation à l'aide de l'acide sulfureux, nous l'avons employée surtout à titre de 

 contrôle dans certains cas difficiles, pour nous assurer si l'on obtenait les 

 mêmes images par les deux procédés. 



(i) Par exemple lorsqu'il est difficile, comme dans les sauterelles, de faire sortir les cellules ; ou encore 

 lorsque le tube est trop mince ou trop délicat pour être traité de cette façon. 



(2) Après quelques tâtonnements on arrive bientôt à saisir, pour chaque objet, le temps pendant lequel 

 il doit rester soumis aux vapeurs d'acide osmique pour être fixé; les cellules en division, toujours très sensi- 

 bles à l'action de cet acide, ne prennent point alors une teinte trop foncée qui nuit à l'observation. 



(3) Nous ne saurions assez recommander le lut au baume de tolu dont nous avons donné la formule dans 

 notre Biologie, p. 12g ; c'est le meilleur de tous les luts dont nous ayons fait usage. 



(4) L'acide sulfureux fixe moins bien le protoplasme, du moins lorsqu'on le fait agir pendant un temps 

 si court. 



