Myxobakterien der Umgebung Wiens. 8b9 



hemmt das Wachstum der verunreinigenden Bakterien stark, das der Myxo- 

 bakterien jedoch nicht. Nach dieser Methode konnte ich leider nicht arbeiten, 

 da sich so große Mengen Agar nur im Autoklaven lösen und mir ein solcher 

 nicht zur Verfügung stand. 



2. Agarnährböden. 



a) Zusammensetzung. 



Als bestes Substrat wird allgemein ein Kartoffel- oder 

 Mistdekoktagar angegeben. Die Wichtigkeit der Konzentration 

 der Nährstoffe betonte erst Vahle (X, p. 181 und 182). Er 

 benutzte vorwiegend einen Nährboden, zu dessen Bereitung er 

 10^ trockenen Kaninchenmist eine halbe Stunde mit 100^ 

 Wasser kochte und daraus nach dem Abfiltrieren ein zwei- 

 prozentiges Agar herstellte. Sehr geeignet erweist sich nach 

 meiner Erfahrung auch ein Heudekoktagar, dasselbe hat den 

 Vorteil, daß es leichter klar zu bekommen ist als Kartoffel- und 

 Mistdekoktagar. Als Agar von bestimmter Zusammensetzung 

 benutzte ich folgendes: 15^ Rohrzucker, 2*5^ Pepton, 0*25^ 

 Magnesiumsulfat, 0'25 g Monokaliumphosphat, 9,^ gut ge- 

 wässertes Agar und 500^ Wasser. Das Wachstum und die 

 Frk.-Bildung waren darauf normal. Zum Nachweis des trypti- 

 schen Fermentes wurde das Hasting'sche IMilchagar verwendet. 

 Fig. 10 zeigt eine solche Pe.-Sch., die dunklen Partien — die 

 Photographie ist vor schwarzem Hintergrund aufgenommen — 

 wurden durch Auflösung des Milchkaseins durchsichtig. Die 

 weiße Linie ist der Impfstrich, dem entlang sich ein Wall von 

 Frk. bildete. Die helle nebelartige Partie um ihn herum, 

 besonders an der oberen Hälfte, ist der vegetative Schwärm 

 und besteht aus Stäbchen. 



Quehl (III, p. 28) und Vahle (X, p. 182) geben an, daß 

 das Agar nur wenige Wochen brauchbar bleibe. Ich bekam 

 jedoch ein kräftiges Wachstum und schöne Frk.-Bildung auch 

 auf einem Agar, das über 3 Monate alt war. Dasselbe stand 

 außerdem stark mit der Luft in Berührung, da es in Eprouvetten 

 schräg erstarrt aufbewahrt wurde. 



