gebracht werden soll. 45 "/o JodalUohol empfiehlt sich besonders für das Studium der 

 Bütschlischen „roten Körnchen", die in ihm fixiert sich besonders intensiv mit Häma- 

 toxylin färben. Pikrin-Schwefelsäure giebt bei nachträglicher Tinktion mit Hämatoxylin 

 sehr deutliche Bilder der chromatischen Elemente des Kerns; Pikrin-Schwefelsäure mit 

 einigen Tropfen i "0 Osmiumsäure oder auch nur letztere allein, eignen sich vorzüglich 

 zu Präparaten, die ungefärbt die Anordnung des Plasmas, die Chromatophoren und 

 sonstige Einschlüsse im Innern der Diatomeenzelle zeigen sollen. Zum Studium der 

 Kernteilung erwies sich die Flemmingsche Chrom-Osmium-Essigsäurc am geeignetsten, 

 da durch sie (ebenso wie durch Sublimat) selbst die feinsten Strukturverhältnisse des 

 Kerns und des Plasmas ausgezeichnet konserviert wurden'). 



Nur die grösseren Diatomeenarten wie Pinnularia maior und nobilis sowie 

 Surirella calcarata wurden unter dem Präpariermikroskop mit Hülfe eines Kapillar- 

 röhrchens einzeln aus dem Schlamme herausgefischt und auch einzeln weiter behandelt; 

 die kleineren Formen wurden stets en masse fixiert und gefärbt, wobei sich folgendes 

 Verfahren am besten bewährte. Von der Oberfläche des Schlammes wurde mit einer 

 Pipette vorsichtig eine Portion Diatomeen abgehoben und dann rasch in ein kleines 

 Reagenzröhrchen gespritzt, welches die Konservierungsflüssigkeit enthielt. Hier ver- 

 weilten die Diatomeen durchschnittlich etwa zehn bis fünfzehn Minuten; sobald sie sich 

 alle am Boden des Glases angesammelt hatten , wurde die darüberstehende Fixirungs- 

 flüssigkeit abgegossen und dann mit Wasser gut ausgewaschen. Dann wurde ßs^/o Alkohol 

 zugefügt und dieser nach und nach durch 70^/0, 95 °/o und schliesslich durch absoluten 

 Alkohol ersetzt, in welchem die Diatomeen so lange blieben, bis aller Farbstoff aus den 

 Chromatophoren extrahiert und die selten fehlenden Fettkugeln vollständig gelöst waren. 

 Durch Zusatz von einigen Tropfen Schwefeläther sowie durch massige Wärme Hess 

 sich dieser Prozess beschleunigen. Sobald die Diatomeen dann vollständig farblos 

 geworden waren, erfolgte ihre Überführung in 95°/n, hierauf in 7o"yo und endlich in 

 35"/,, Alkohol, aus dem sie wiederum in destilliertes Wasser und von diesem in die 

 Färbungsflüssigkeit gebracht wurden. 



Zur Tinktion des ruhenden Kerns sowie dessen Teilungsstadien bediente ich 

 mich fast ausschliesslich des Delafiel dschen Hämatoxy lins, welches von allen ver- 

 suchten Farbstoffen die schönsten und klarsten Bilder gab. Man darf es indessen nur 

 in sehr verdünnter Lösung einwirken lassen und muss hierbei gleichzeitig den ganzen 

 Verlauf der Färbung unter dem Mikroskop kontrollieren, damit nicht, was sehr leicht 

 geschehen kann, eine Überfärbung eintritt. Ausser Hämatoxylin habe ich auch Alaun- 

 karmin sowie Bora xkar min versucht, doch war ich mit den damit erzielten Resul- 

 taten nicht sehr zufrieden. Mit Hämatoxylin färbt sich das Centrosom sowie besonders 



I) Neuerdings habe ich auch mehrere Male das gegenwärtig so viel verwandte Formol zur 

 Konservierung von Diatomeen benutzt. Kern und Plasma erschienen durch dasselbe leidlich gut fixiert, 

 doch wird der braune Farbstoff der Chromatophoren bald ausgezogen. Grüne Flagellaten und Algen 

 lassen sich mit Forniol besser konservieren. 



