auf diese Weise gelingt. So war es beispielsweise bei den 

 untersuchten Caryophyllaceen , Malvaceen , Geraniaceen, 

 Cactaceen , Rosaceen , Convolvulaceen , Scropbulariaceen, 

 Gesneriaceen u. a. m., und auch unter den Monocotyledonen 

 ist bei Hemerocallis der generative Zellkern kaum mit 

 Jodgrün-Essigsäure zu tingiren. 



Der Umstand, dass es bei vielen, vornehmlich dico- 

 tylen Pflanzen im reifen Pollenkorn nicht mehr möglich 

 ist, mit Jodgrün den Zellkern nachzuweisen, hatte in mir 

 die Vorstellung erweckt, dass in solchen Fällen die Zell- 

 kerne im reifen Pollenkorn zerfallen. Letzteres ist nun 

 durchaus nicht der Fall. Wo Jodgrün ohne Wirkung 

 bleibt, gelingt oft der Nachweis der generativen und vege- 

 tativen, oder doch der leichter tingirbaren generativen Zell- 

 kerne mit Pikrocarmin. Dieses Reagens dringt aber nicht 

 durch die Pollenhäute ein und müssen die Pollenkörner 

 daher stets in demselben zerdrückt Averden. Guter Pikro- 

 carmin tingirt in wenigen Minuten, ruft aber Quellungs- 

 erscheinungen an den Zellkernen hervor, so dass uns diese 

 in etwas veränderter Gestalt entgegentreten. Dieses 

 Reagens kann sogar unter Umständen die zu beobachtenden 

 Zellkerne ganz zerstören: so beispielsweise bei Epilobium. 

 Wo mit Picrokarmin der erwünschte Effect nicht erreicht 

 wurde, lässt sich derselbe mit Boraxcarmin bei richtiger 

 Behandlung wohl noch erreichen. Die Pollenkörner werden 

 zunächst in einen Tropfen 2 **, o Essigsäure gelegt; nach 

 einiger Zeit setzt man vom Deckglasrande einen Tropfen 

 Boraxcarmin hinzu und lässt eine Stunde einwirken. 

 Hiernach fügt man einige Tropfen Salzsäure - Alcohol 

 (0,5 Theile concentr. Salzsäure zu 100 Theilen 70 o/^ Alcohols) 

 hinzu, während man den Carmin durch Fliesspapier vor- 

 sichtig aufsaugen lässt; schliesslich lässt man etwas ver- 



