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Fig. 55. Älopecurus pratensis. 



Vergr. 240. 

 Fig. 55. Anhängsel des Narbenschenkels mit Pollenkorn und einge- 

 drungenem Pollenschlauch. 



Fig. 56 a— e. Agrostemma Githago. 



Vergr. '2i0. 

 Fig. 56 a — e. Narbenpapillen und Gewebetheile der Narbe nebst ein- 

 gedrungenen Pollenschläuchen. 



Fig. 57—59. Malva silvestris. 



Fig. 57. Theile des Griffels mit einem an den Narbenpapillen haftenden 

 Pollenkorn und der eingedrungenen, schlauchtreibenden Plasnia- 

 masse eines Pollenkorns im Innern. Vergr. 90. 



Fig. 58 und 59. Narbentheile mit Papillen und Pollenkörneru, welche 

 zum Theil freie und zum Theil in die Narbenpapillen einge- 

 drungene Pollenschläuche zeigen. 



Fig. 60 a und b. Orchis pyramidalis. 



Vergr. 540. 

 Fig. 60 a und b. Der Embryosack, in b mit Theilen des innern Integu- 

 ments, s Synergiden, sn Synergidenkern, k Synergidenkajjpe, o Ei, 

 on Eikern, a Gegenfüsslerinnen, mn secundärer Embryosackkern. 



Fig. 61—77. Orchis latifolia. 



Vergr. 540. 



Fig. 61. Embryosack unmittelbar vor der Befruchtung, die Syner- 

 giden gestreift. Nach Jodgrün-Essigsäure-Behandlung. 



Fig. 62. Ein Pollenschlauch aus künstlicher Cultur mit nur einem 

 dichteren, generativen und einem weniger dichten, vegetativen 

 Zellkern. Nach Jod-Behandlung. 



Fig. 63 a und b. Freigelegte Pollenschläuche aus dem Fruchtknoten, 

 mit je zwei generativen und einem vegetativen Zellkern. Der 

 Pollenschlauch 63 a von einem Funiculus losgelöst. Nach Jod- 

 Behandlung. 



Fig. 64. Ein in die Mikropyle eben eingedrungener Pollenschlauch, 

 dessen generativen Zellkerne sich noch ausserhalb der Mikropyle 

 befinden. Nach Jod-Behandlung. 



Fig. 65. Der Pollenschlauch dringt in die Mikropyle ein. Chromsäure- 

 Hämatoxylin-Behandlung. 



Fig. 66. Der eine, generative Zellkern innerhalb der j^likropyle. Al- 

 cohol-Hämatoxylin-Behandlung. 



Fig. 67. Der gfMierative Zellkern (Spermakern) des Pollenschlauches 



