264 TyphusbacilluR. Dift'ercnzirung von ähnlichen Bacillen. 



stattet, dass die Platten sich bis zu 25-26 ^ C. fest erhalten. Auch in diesem 

 Boden beobachtet man dieselben unterscheidenden Merkmale wie bei der 

 ursprünglichen Methode Piobkowski; nur erleidet zuweilen die Entwick- 

 lung der Colonien eine leichte Verzögerung. Zur richtigen Durchführung 

 der Methode ist es vorzuziehen, dass das Probematerial direct dem Kranken 

 entnommen wird; verwendet man Culturen aus dem Laboratoriun), so ist es 

 rathsam, dass sie so frisch als möglich sind, da nach den Experimenten dei- 

 Verff. die alten Culturen aus dem Laboratorium allmählich ihre unter- 

 scheidenden Merkmale verlieren. Polverini. 

 Drigalski und Conradi (812). Es unterliegt keinem Zweifel, dass 

 keine einzige der bisher angegebenen Methoden, welche darauf abzielten, 

 eine schnelle Tr en nung u. sichere Unterscheidung von Typhus- 

 bac. u. ihnen ähnlichen Stäbchen aus Dejectionen typhuskran- 

 ker ^ bezw. typhns verdächtiger Personen oder aus Material, das auf den 

 Gehalt von Typhusbac. suspect war, zu ermöglichen, den Untersucher in 

 den Stand gesetzt hat dieses Resultat thatsächlich zu erreichen. Von 

 solchen Erwägungen geleitet, haben die Verf. nach einem neuen Verfahren 

 gesucht, welches diesem Ziel erheblich näher gekommen zu sein scheint. 

 Sie haben ihren Nährboden construirt, indem sie versuchten die Trennung 

 der Typhus- von den Colibac. auf Grund des verschiedenen Gährvermögens 

 beider Bacterienarten durchzuführen. Nachdem sie sich auf Lakmus-Milch- 

 zucker- Agarplatten überzeugt hatten, dass alle ächten Coliarten bei Ober- 

 flächenwachsthum u. ungehindertem Luftzutritt Rothfärbung u. alle Typhus- 

 colonien Blaufärbung aufweisen, bereiteten sie folgenden Nährboden. Drei 

 Pfd. zerkleinertes, mit 2 Liter Wasser übergossenes Rindfleisch bleibt bis 

 zum nächsten Tage stehen, das abgepresste Fleischwasser wird gekocht, 

 filtrirt, mit 20^ Pepton Witte, 20 « Nutrose, 10 ^^ Kochsalz versetzt und 1 

 Stunde gekocht; dazu 60*^ feinster Stangenagar 3 Stunden gekocht, schwach 

 alkalisirt, filtrirt, ^/^ Stunde gekocht. 260 ccm Lakmuslösung 10 Minuten 

 kochen, dazu 30*^ chemisch reiner Milchzucker zusammen 15 Minuten 

 kochen. Die heisse Lakmus-Milchzucker-Lösung zu dem flüssigen heissen 

 Nälu'agar zugefügt, gut geschüttelt und die etwa geschwundene alkalische 

 Reaction wieder hergestellt. Darauf 4 ccm heisser steriler Lösung von 

 10 ''/o wasserfreier Soda, ferner 20 ccm einer jedesmal frisch bereiteten 

 Lösung von 0,1 Krystallviolet B. Höchst in 100 ccm warmen destillirten 

 Wassers. Die zu untersuchenden Substanzen werden mittelst rechtwinkelig 

 gebogenen Glasspatels auf die Oberfläche des erstarrten Nährbodens ge- 

 strichen, nachdem dieser in 1—2 cm hohe 15 — 20 cm im Durchmesser 

 haltende Doppelschalen in einer Menge von 20 — 25 ccm ausgegossen war. 

 Die Agarschicht darf nicht unter 2 mm dick sein. Man muss immer eine 

 Plattenserie untersuchen. Nach beendigtem Ausstrich bleiben die Platten 

 so lange offen stehen, bis die Agaroberfläche vollständig trocken geworden 

 ist, sonst fliessen die sich entwickelnden Colonien in einander. Nach 14 

 bis 16 Stunden Verweilen bei 37*^, am schönsten nach 20 — 24 Stunden, sind 

 alle Colonien von Coliarten leuchtend roth, nicht dui'chsichtig, alle Colonien 

 von Typhusbac. blau, mit einem Stich ins Violette, nicht doppelt contourirt 



