354 Typhusbacillue. Differenzirung vom Bacterium coli. 



lauge zugesetzt sind, geben Coli- und Typhuscolonien deutliche Waclis- 

 thunisunterschiede, welche es Capaldi (833) ermöglicht haben, mehrmals 

 aus Stühlen Typhusbac. herauszufinden. Zur weiteren Prüfung hat Verf. 

 dann die betr. Colonien auf die in dem vorigen Referat besprochenen Nähr- 

 böden (den asparaginhaltigen und den aus WixTE'schem Pepton plus Mannit 

 präparirten) tibertragen und ihr Wachsthum controlirt. E. Fraenkel. 



Die bei dem Bestreben einer besseren Differenzirung beider Bacterien- 

 arten entsprungene Methode Kasliida's (892) beruht in dem Verhalten 

 des Bact. coli, auf einem durch Lackmus blaugefärbten, ausserdem Lactose 

 und Harnstoff enthaltenden festen Nährboden nach ein Mal erfolgter Säure- 

 bildung stärker Ammoniak zu produciren. Giesst man milchzuckerhaltigen, 

 mit Phenolphthalein oder Rosolsäure versetzten Nähragar in Petri- Schalen, 

 so verblasst derselbe nach Entwickelung von Colibac. Nach einigen Tagen 

 tritt unter Schwinden der sauren Reaction die Rothfärbung dieser Nähr- 

 böden wieder auf und zwar beschränkt sie sich nicht nur auf das Nähr- 

 substrat selbst, sondern auch viele Colonien färben sich. Bei Typhusculturen 

 fehlt diese Veränderung. Der Wiedereintritt der alkalischen Reaction be- 

 ruht auf der Bildung von Ammoniak. Die genauere Zusammensetzung des 

 Nährbodens ist folgende: Die l^/g^/o agarhaltige neutrale Nährböuillon 

 wird mit 2 ^/^ Milchzucker, 1 "/y Harnstoff und 30 ^/^ Lackmustinctur ver- 

 setzt. Nach 16-18 Stunden geht die blaue Farbe der bei Bruttemperatur 

 conservirten und mit Colibac. beschickten Nährböden in die rothe über, um 

 nach 24 Stunden durch ammoniakalische Zersetzung des Harnstoffs wieder 

 die ursprünglich blaue anzunehmen. Bei Aussaat von Typhusbac. auf solche 

 Nährböden bleibt die Farbenänderung aus. E. Fraenkel. 



Stoddart (941) empfiehlt, ebenso wie Hiss (s. p. 356), ein halbflüssiges 

 Gemisch von Gelatine und Agar, um den Typhusbac. von dem Bact. 

 coli zu trennen. Die Methode scheint jedoch keinen grossen Werth zu 

 haben, denn St. sagt selbst, dass er den Typhusbac. nicht von den wirklich 

 typhusähnlichen Bacterien trennen konnte. Sonst bietet die Arbeit nichts 

 Neues. Kanthack. 



Robin (930) fertigte zum Studium der Wirkung des Bact. coli auf die 

 Lactose neue Nährböden an. Recept für Bouillon: man mischt 5 g Pepton 

 Collas, 0,05 g Kaliphosphat, 0,50 g Natriumchlorid, 250 g destill. Wasser, 

 1 cm einer Iproc. wässerigen Bleu soluble-Lösung und setzt von einer nor- 

 malen Kalilösung tropfenweise soviel zu, bis die Lösung völlig entfärbt 

 wird; erwärmt und giebt 20 g Lactose hinzu. Nach Auflösen tiltrirt man, 

 füllt 10 ccm in PASxEUE'sche Flacons und sterilisirt im Autoclav 15 Minuten 

 bei 105^. Mittels Platinnadel geimpfte und 35 ^ C. ausgesetzte Bouillon färbt 

 sich innerhalb 15 Stunden zu Folge Säurebildung intensiv blau. Recept 

 für Agar-Agar: Man mische 8 g Agar-Agar, 0,10 g Kaliphosphat, 1 ccm 

 Bleu soluble (l^/o)j 250 g destill. Wasser, 35 g normale Kalilösung; er- 

 hitze 5-10 Minuten auf 115", setze 10 g Milchzucker hinzu, filtrire heiss, 

 fülle und sterilisire 15 Minuten bei 105 ^. Mit Bact. coli geimpft entwickelt 

 sich nach 12-15 Stunden blaues Colorit, und auch der Nährboden selbst 

 färbt sich blau. Typhusbac. lassen diese Nährböden ungefärbt. Krompecher. 



