Blastoinyceten. Morphologie. Biologio. 593 



der Hefezellen unterscheiden sich von den der von Feinberg untersuchten 

 Rhizopoden dadurch, dals bei den erstem der Kernpunkt an das Proto- 

 plasma grenzt, während er bei den letztern immer von einer ziemlich breiten 

 scharf begrenzten Zone von Kernsaft umgeben ist. Iledinger. 



Hirschbruch (1 894) beschreibt verschiedene Degenerationsformen der 

 Kerne bei Hefezellen, wie sie bedingt werden durch das Alter der Zelle, 

 durch Verarmung des Nährbodens an Wasser wie an festen Substanzen, 

 durch Vergiftung der Zelle infolge der Anhäufung der eigenen Stolfwechsel- 

 produkte. Die sämtlichen Degeuerationsformen lassen sich auch sehr leicht 

 experimentell hervorrufen. Die Degenerations Vorgänge am Hefekern sind : 



1. Kernfragmentierung unter dem Bilde der Karyorrhexis und Karyotrypsis; 



2. Kernlüsung; 3. Kernverlust, wobei nur die säurefestfärbbaren Kern- 

 substanzen verloren gehen, oder dann totaler Kernverlust. Hedinger. 



Jenseu (1897) hat über die wichtigsten der bisher gefundenen und als 

 pathogen beschriebenen Hefearten eine vergleichende Untersuchung vor- 

 genommen und zwar folgende: 



1. Saccharomyces neoformans Sanfelice (2 verschiedene Kulturen); 



2. „ lithogenes Sanfelice; 



3. Blastomyces von Carcinoma mammae hominis Sanfelice; 



4. „ „ adenocarcinoma ovarii hominis Sanfelice; 



5. „ „ Carcinoma mammae Flimmer; 

 C. „ aus Milch Klein; 



7. Saccharomyces Busse; 



8. „ subcutaneus tumefaciens Curtis; 



9. „ granulatus Vüillemin und Legrain; 



10. Blastomyces Bra; 



11. „ Leopold; 



12. Saccharomyces tumefaciens albus Foulerton. 



Von den zahlreichen versuchten Nähi'sub Straten wiu'den Malzwasser 

 (5^/o Malzextrakt) und die damit bereiteten Agare und Gelatine bevor- 

 zugt. In den Gärungsversuchen wurde ein Nährmedium enthaltend 2^/q 

 Cibils-Fleischextrakt, 1*^/^ Wittes Pepton und 2^/^ einer Zuckerart (Dex- 

 trose, Maltose, Saccharose, Lactose) in Dürhams Gärröhrchen^ verwendet. 



Die Sporenbildung wurde auf schwach ausgekerbte Gipsblöcke oder 

 Wasseragar in Glasdosen bei 15°C.-20-25 und 30° C. untersucht. Behufs 

 Häutchenbildung wurden Kulturen in verschiedenen Nährflüssigkeiten bis 

 14 Tage beobachtet. Zur mikroskopischen Untersuchung empfiehlt Verf. 

 folgendes Verfahren: 



a) Kultur aufMalzagar wird in schwacher (P/oo) wässriger Lösung von 

 Neutralrot ausgeschwemmt; am besten wird ein Tropfen l^/^, Essigsäure 

 pro 20 cm'^ Farblösung zugesetzt, da sich sonst gelbe Krystallnadeln bilden; 



b) Hefehaltige tierische Gewebe werden am besten in Sublimatlösungen 

 (Zenkers Flüssigkeit) fixiert. 



*) In ein gewöhnliches Kulturglas (16 X 160 mm) mit Nährflüssigkeit wird 

 ein kleineres Rölirchen (10x70 mm) umgekehrt eingesetzt; bei der Sterili- 

 sierung wird die Luft ausgejagt und das Röbrchen mit Flüssigkeit gefüllt. Ref. 

 Banmgarten's Jahiesbericbt XIX 88 



