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MüLLERSclie Flüssigkeit -}- ö^/^. Sublimat -\- 5*^/q Formol); Formol 

 wird ex tempore zur Stammlösung zugegossen. Die Fixierung der 

 jüngeren Embryonen dauerte eine bis 3 Stunden, der älteren 3 bis 



6 Stunden. Die Präparate wurden eingebettet teilweise in Paraffin, 

 teilweise in Celloidin. Dies letztere hatte in diesem Falle, wie über- 

 haupt bei cytologischen Untersuchungen , viele Vorzüge , weil die 

 Strukturbesonderheiten sich dabei besser erhalten und das Ein- 

 schrumpfen der Zellkörper fast ganz ausbleibt. Dies war gerade 

 für den vorliegenden Zweck von großer Wichtigkeit. Schnittdicke 



7 /i. Zur Herstellung der Celloidinserien diente die vom Verf. vor- 

 geschlagene und von W. Dantschakoff (diese Zeitschr. Bd. XXV, 

 1908, p. 32 — 37) verbesserte Methode des Aufklebens der Celloi'din- 

 schnitte. Gefärbt wurde teilweise mit Eisenhämatoxylin , hauptsäch- 

 lich aber mit Eosin-Azur (10 cc O'lprozentiger wässeriger Eosin- 

 lösung -{- 10 cc O'lprozentiger Lösung von Azur 11 -|- 100 Wasser J 

 24 Stunden, Differenzierung in 95prozentigem Alkohol, dann Xylol, 

 Balsam. Schiefferdecker {Bonn). 



Baecchi, B., Neue Methode zum Nachweis der Sperm ato- 

 zoën in Zeug fleck en (Deutsche med. Wochenschr. 

 Jahrg. XXXV, 1909, No. 25, p. 1105—1106). 

 Verf. teilt eine neue Methode zum Nachweise der Spermatozoën 

 in den Zeugflecken mit, von der er hervorhebt, daß sie Einfachheit 

 und größte Schnelligkeit der Ausführung mit sehr deutlichem Her- 

 vortreten der Spermatozoën auf dem völlig farblosen Gewebe ver- 

 bindet. Methode A: 1) Färbung eines Fadens des verdächtigen 

 Gewebes in einer konzentrierten wässerigen Lösung von saurem 

 Fuchsin (15 bis 30 Sekunden). 2) Entfärbung des Fadens in salz- 

 saurem Alkohol (70prozentiger Alkohol 100 cc, Salzsäure 1 cc) 10 bis 

 30 Sekunden, bis er eine blaßrosa Färbung angenommen hat. 

 3) Absoluter Alkohol 15 bis 20 Sekunden. 4) Auffaserung auf einem 

 Objektträger in einem Tropfen Xylol. Dann bedeckt man das Präparat 

 mit einem Deckglase und untersucht. Soll das Präparat aufbewahrt 

 werden , so saugt man mittels Fließpapiers etwas Kanadabalsam 

 unter das Deckglas. Bei allen Flecken lege man das Gewebe vor 

 der Färbung einige Stunden in destilliertes Wasser. Die Präparate 

 müssen zuerst bei schwacher Vergrößerung (90- bis lOOmal) unter- 

 sucht worden: die Gewebsfasern sind meist völlig farblos, manche 

 leicht rosa gefärbt , alle durchsichtig , und auf ihnen treten sehr 

 deutlich als duukelrote Punkte die Köpfe der Spermatozoën hervor. 



