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eingebettet. Zur leichteren Orientierung beim Einbetten war es 

 zweckmäßig, alle kleineren Objekte mit Eosin vorzufärben. Für eine 

 geringe Anzahl von Präparaten kam auch die FLEiniiNGSche Fixierung 

 zur Anwendung. Gefärbt wurden die Schnitte mit Boraxkarmin, 

 Hämalaun oder Heidenhains Eisenhämatoxylin. 



E. Schoebel {Neapel). 



Luna, E., Lo sviluppo dei pia stesomi negli anfibi (Arch, 

 f. Zellforsch. Bd. 11, 1913, p. 583—629 m. 2 Tfln.). 

 Die Untersuchung wurde an Eiern und Larven von Bufo vulgaris 

 ausgeführt. Die beste Fixierung gab eine dreitägige Behandlung der 

 Objekte mit dem einmal während dieser Zeit zu erneuernden Regaud- 

 schen Gemisch aus 5 Teilen Sprozentiger Kaliumbichromatlösung und 

 einem Teil Formol mit einem Zusatz von ein bis 2 Tropfen Eisessig 

 auf 25 cc Flüssigkeit und nachfolgende zehntägige Chromierung in 

 dreimal zu erneuernder oprozentiger Kaliumbichromatlösung. Nach 

 gründlicher 24stündiger Wässerung und der üblichen Weiterbehandlung 

 erfolgte Einbettung in Parafün, Mikrotomieren und Färben der Schnitte 

 mit Eisenhämatoxylin. Zur Entfernung des reichlichen und meist 

 störenden Pigmentes wurden die Objekte in toto nach der der Chro- 

 mierung folgenden Wässerung während 24 Stunden abwechselnd 4 bis 

 6 Stunden mit einer 2prozentigen Lösung von Kaliumpermanganat 

 und 15 bis 30 Minuten mit einer ^/aprozentigen Lösung von Oxal- 

 säure behandelt. Diese Methode ergab nicht nur eine vollständige 

 Entpigmentierung, sondern beeinflußte auch die Färbarkeit der Piasto- 

 somen in günstiger Weise. E. Schoebel {Neapel). 



Mc Kibben, Paul S., The e y e - m u s c 1 e nerves i n N e e t u r u s 

 (Journ. Compar. Neurol, vol. 23, 1913, No. 3, p. 153—163 

 w. 6 pi.). 

 Die außerordentlich geringe Größe der Augenmuskelnerveu er- 

 schwert ihr Studium an frischem oder konserviertem Materiale, man 

 muß sie daher intravital mit Methylenblau färben und sorgfältig unter 

 einem Binokularmikroskope präparieren, dann sind die Nerven leicht 

 darzustellen. Die vom Verf. angewendete Methode entsprach im 

 wesentlichen der von Wilson (Wilson, J. Gordon, Litra-vitam staining 

 with methylene blue. Anat. Ree. vol. 1, 1910). Die Tiere wurden 

 auf einem Brette festgelegt , die Schwanzwurzel wurde durch eine 

 hölzerne Klammer unbeweglich festgehalten. Der Schwanz wird ab- 

 geschnitten und nach Ausbluten wird die Injektionsmasse durch die 

 Schwanzarterie eingespritzt. Eine 0*066- bis 0'075prozentige Methylen- 

 blaulösung (Grübler „medicinale purum" oder „rectificatum nach 

 Ehrlich") in Salzlösung erwies sich am brauchbarsten : 



Methylenblaulösung, 0"5prozentig, wässerig. 13—15 cc 

 Kochsalzlösung, O'Töprozentig 87 — 85 „ 



