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Stunden, gewechselt werden muss, und schließlicli in 90 %ig'en Alko- 

 hol übertragen. 



Von den übrigen zahlreichen Conservirungsflüssigkeiten waren 

 von vorn herein diejenigen ausgeschlossen, welche die Dottermassen 

 in irgend einer Weise dunkel tingiren, weil so conservirte Eier keine 

 guten Oberflächenbilder ergaben, und es auch in Folge dessen bei 

 der Einbettung in Paraffin nicht möglich war, den Embryonen die 

 gewünschte Lage zu geben. Hierzu gehörte auch leider eine gleich 

 zu erwähnende modificirte FLEJiMixG'sche Lösung, die sonst in Hin- 

 sicht der Erhaltung der histologischen Ötructur mir die besten Resul- 

 tate lieferte. 



Die sonst so beliebte Mischung von Sublimat mit Eisessig 

 hat sich bei der Conservirung der Kerets-Eiev absolut nicht bewährt. 

 Ich habe sie in den verschiedensten Mischungen angewendet, jedoch 

 war eine Gesammtschrumpfung der Eier unausbleiblich. Verhältnis- 

 mäßig günstige Eesultate, aber nur für Oberflächenbilder, erhielt ich 

 noch mit folgender Mischung: Concentrirte Sublimatlösung 100 Theile, 

 Aqua destillata 100 Theile, Eisessig 5 Theile. Die Eier wurden in 

 dieser bis auf 40° Celsius erwärmten Lösung 5 Minuten gelassen, 

 alsdann direct in 50";oigen Alkohol gebracht, wo sie bis 2 Stunden 

 blieben, in 70 %igem Alkohol ausgewaschen und aufbewahrt. Sie geben 

 ganz gute Oberflächenbilder, eignen sich jedoch nicht zum Studium 

 der Schnitte, weil die histologische Structur schlecht erhalten ist und 

 die Zellgrenzen nicht hervortreten. Außerdem lassen sich die Eier 

 schlecht aufbewahren, da nachträgliche Schrumpfung in einigen 

 Wochen eintritt. 



Größere Embryonen, welche schon durch ihre äußere Form eine 

 Orientirung behufs Anfertigung von Schnitten ermöglichen, wurden aus- 

 schließlich mit einer modificirten FoL-FLEMMiNG'schen Lösung con- 

 servirt: IVoige Osmiumsäure 1 — 1,5 Raumtheile, l%ige Chromsäure 25 

 Raumtheile, 2 "/„ige Essigsäure 5 Raumtheile, Wasser 70 Raumtheile. 

 Die Embryonen werden 1 Stunde in der Lösung gelassen, alsdann 

 24 Stunden in Wasser ausgewaschen, auf 3 Stunden in 50o/oigen Alkohol 

 übertragen und in 70%igem Alkohol aufbewahrt. Mit keiner anderen 

 Conservirungsflüssigkeit habe ich so gute Resultate erzielt: die 

 histologische Structur ist vorzüglich erhalten, die Zellgrenzen sind 

 scharf und die Tinctionsfähigkeit lässt nichts zu wünschen übrig. 



Für die Gewinnung guter Oberflächeubilder eignet sich die 

 KLEiNENBERG'sche alkoholische Hämatoxylinlösung am besten. Alle 

 wässerige oder schwach alkoholische Farbstofiflösungen konnten nicht 



