Studien über kraiiklioltseiTegendc l'iotozoeii. , H73 



bei Färbungsgrad 11 und IV nach Maurer. Bei Besprechung der Kernvermehrung komme ich 

 noch einmal hierauf zurück. Trotz dieser Unsicherheit wird man die prachtvolle Eomanowsky- 

 sche Färbung nicht mehr in der Malariatechnik entbehren und kommt es nur darauf an, sie 

 stets mit anderen Kernfärbungen, die zwar viel mattere Bilder geben, aber nicht überfärben, 

 zu kontrollieren. Ich bin daher bei meinen Untersuchungen folgendermaßen verfahren. Die 

 mit Sublimat-Alkohol fixierte und bis auf absoluten Alkohol gebrachten Deckgläser werden 

 wieder durch die Alkoholstufen bis auf \\'asser gebracht und kommen dann auf 24 Stunden 

 in die ßomanowsky-Nochtsche') Mischung, "\\ill man nun ein überfärbtes Präparat sehen, so 

 braucht man nur mit Wasser abzuspülen, zu trocknen und in Cedernöl einzuschließen. Ich 

 habe fast niemals Überfärbung erhalten, wenn ich weiter auf dem nassen A\'ege verfahre, d. h. 

 abspülen mit Wasser und dann schnell durch die Alkoholstufen bis Xylol, dann wird gerade 

 soviel Farbstoff' ausgezogen, daß man die reine Kernfärbung erhält. Nun studierte ich das so 

 gewonnene Präparat und zeichnete die für meine Zwecke wichtigen Stadien mit dem Zeichen- 

 apparat. Dann wurde zur Kontrolle die Hämatoxylinfärbung (Grenachers 24 Stunden bei 30" 

 oder Eisenhämatoxolin, cf. vorher) vorgenommen. Das Deckglas wurde, nachdem ich mir seine 

 Lage auf dem Objektträger durch Diamanstriche fixiert hatte (für die Noniusnotizen) abgelöst, 

 wieder durch Xylol, Alkohol, A\' asser bis in die betreffende Farbe gebracht usw. Man kann so 

 dasselbe Präparat in der verschiedensten Weise färben, ohne es zu schädigen und lernt die- 

 selben Stadien gründlich kennen, denn bei häufiger Untersuchung sieht man stets mehr als 

 bei einmaliger. 



Von großer Wichtigkeit, insbesondere für die Unterscheidung der Gameten von den 

 Schizonten ist das genauere Studium der Exkrete der Malariaparasiten, welche sie bei ihrem 

 Wachstum als braun gefärbtes Pigment im Plasma aufspeichern. In gefärbten Präparaten sind 

 oft die kleinsten Teile derselben schwer zu erkennen; besonders bei den Gameten macht sich 

 ferner die Schwierigkeit geltend, die einzelnen, ebenfalls dunkel gefärbten Chromatinbrocken 

 von naheliegenden Pigmentstäbchen zu unterscheiden. Ich habe nun eine einfache aber sichere 

 Methode gefunden, um das Pigment stets zu erkennen und in seinen kleinsten Teilen zu studieren. 

 Sie besteht in der Untersuchung der Parasiten im polarisierten Licht. Das Pigment aller 

 Malariaparasiten ist nämlich in allen Stadien derselben doppeltbrechend und leuchtet bei 

 gekreuzten Nicols prachtvoll aus dem vollkommen dunklen Parasitenkörper hervor. Man kann 

 mit dem Zeichenapparat auf diese Weise reine Pigmentbildcr entwerfen, wenn man mit weißer 

 Tusche auf schwarzem Papier die Konturen der Pigmentkörner bei starker Vergrößerung nach- 

 zieht. Dreht man dann das Prisma, so kann man in diese Pigmentbilder das Farbenbild ein- 

 tragen. Natürlich muß man stärkste künstliche Beleuchtung für das Mikroskop verwenden 

 und selbst im Dunkeln sitzen. Ich hoffe, daß diese Entdeckung der Doppeltbrechung des Pig- 

 ments ebenso wie mir, auch vielen anderen Malariaforschern gute Dienste leisten wird; auch 

 als diagnostisches Hilfsmittel dürfte sie eine Bereicherung der Malariatechnik darstellen. 



Die Ausstriche von Milz und Knochenmark, die ich bei den Sektionen im hiesigen 

 Seehospiz erhielt, wurden ebenso wie die Blutausstriche mit Sublimat-Alkohol fixiert und nach 

 verschiedenen Methoden gefärbt; außerdem wurden stets kleine Gewebstückchen in toto kon- 

 serviert (Sublimat-Alkohol oder Herrmannsche Mischung) und nach Paraffineinbettung in Schnitt- 

 serien zerlegt. Zur Färbung der Schnitte gebrauchte ich die verschiedensten Methoden, be- 



') Ich liabe auch die audcreu neueren Angaben (cf. Anm. S. 372) teilweise probiert, finde aber Nocbts 

 Verfahren am bequemsten und sichersten. 



