Studien ülier knuikheitscrrogoude Protozoon. 42;\ 



Fig. 13. Aufschwemniung von Sporozoiten in verdünntem (durcli Serum) Meuschenblut. Die SporozoitiMi 

 in den verscliiedensten Stadien der Bewegung, zwei sind im Begriff, in die Blutkörperchen (gelb) einzudringen. 



Fig 14. Aufschwemmung von Sporozoiten in verdünntem Kattenblut nach 18 stündigem Verweilen in 

 der feuchten Kammer im Thermostaten. Die Sporozoiten sind körnig zerfallen und zu Bündeln agglutiniert. 



Fig. 15o— 15/(. Eindringen eines Sporozoiten in ein rotes Blutkörperchen und Umwandlung desselben 

 in ein den jungen Schizonten ähnliches, anioeboides Stadium. 



Fig. 16. Junger Schizont, ca. 6 Stunden nach der Schizogonie; Beginn der Pigmentbildung. 



Fig. n. Schizont, ca. 12 Stunden nach der Schizogonie. 



Fig. 18. Schizont auf der Höhe seiner vegetativen Tätigkeit, lebhafte amocboide und Pigmeutbewegung, 

 ca. 24 — 28 Stunden nach der Schizogonie. 



Fig. 19 n — 19 6. Zwei aufeinander folgende Stadien der ersten Kernteilung des erwachsenen Schizonten 

 zur Schizogonie. 



Fig. 20. Schizont in Vorbereitung zur Schizogonie. Im Plasma 7 Iverne, von denen 3 im Hautelstadium 

 sich befinden. 



Fig. 21. Schizogonie; Auswanderung der Merozoiten. 



Fig. 22 a — 22 i. Zwei Phasen der Gestaltsveränderungen eines freien Merozoiten. 



Fig. 23 a — 23 f. Sechs aufeinander folgende Stadien der Gestaltsveränderung und Gleitbewegung eines 

 Merozoiten. Die dunkle, scharfkantige Masse, an welcher der Keim in Fig. 23 a — d dicht anliegt, von der er sich 

 aber in Fig. 23 e — f entfernt hat, ist ein kleiner Fremdkörper, eine Verunreinigung im Präparat unbekannter Natur. 



Fig. 24 a — 2if. Eindringen eines Merozoiten in ein rotes Blutkörperchen. 



Fig. 25. Jüngstes erkennbares Stadium eines Mikrogametocyten. Erkennbar durch die im polarisierten 

 Licht doppelt brechende Kernmembran. Die Doppelbrechung wird durch Auflagerung feinster Pigmentkörnchen 

 bedingt. 



Fig. 26. Größerer Mikrogametocyt. 



Fig. 27. Ausgebildeter, freier Mikrogametocyt. 



Fig. 28. Mikrogametenbildung im Blut aus dem Darm des Anopheles. 



Fig. 29. Mikrogamet während seiner schlängelnden Bewegung. 



Fig. 30. Jüngstes Stadium eines Makrogameten. 



Fig. 31. Größerer Makrogamet. 



Fig. 32. Ausgebildeter, freier Makrogamet. 



Fig. 33. Eeduktionskuospung des Kerns bei der Reifung des Makrogameten im Blut aus dem Darm des 

 Anopheles. 



Fig 34. Der abgeschnürte Reduktionskörper ist in zwei Brocken zcrfiillen, der reduzierte Kern rückt 

 von der Oberfläche der Zelle in die Mitte. 



Fig. 3.7. Befruchtung des Makrogameten durch einen Mikrogameten. 



Fig. 36. Bildung des Ookineten; der Befruchtungspol wird bei der Bildung des beweglichen Fortsatzes 

 zum Hinterende; hier wird im Moment des Eindringens des bevorzugten Mikrogameten Gallerte abgeschieden, 

 welche die ausgesperrten Mikrogameten verklebt. 



Fig. 37. Abrücken des Ookineten von dem Mikrogameten - Konglomerat, durch Gleitbewegung unter 

 reichlicher Abscheidung von Gallerte am Hinterende. Kerne noch nicht verschmolzen. 



Fig. 38. Ookinet während der Gleitbewegung; er verliert am Hinterende Pigment. Kerne noch nicht 

 verschmolzen. 



Fig. 39. Krümmungsbewegung eines Ookineten. Synkaryon fertig, langgestreckt spindelförmig. 



Fig. 40. Peristaltische Kontraktionen eines Ookineten. 



Tafel XXn. 



Alle Figuren sind nach Präparaten gezeichnet, die in verschiedener Weise (meist feucht mit heißem 

 Sublimat- Alkohol) fixiert und zunächst nach Romanowsky-Nocht gefärbt, nach der ersten Untersuchung aber zum 

 zweiten Mal mit Eisenhämatoxylin nach Heidenhain oder Grenachers Hämatoxylin und in anderer Weise gefärbt 

 waren (cf. den Abschnitt über die Untersuchungsmethoden). Die Kernbilder wurden so nach der Romanowsky- 

 Nochtschen Färbung gezeichnet, dann nach anderen Färbungen kontrolliert und die feineren Plasmastrukturen 

 nach der licidenhainschen Färbung eingetragen. Die feinere Verteilung des Pigments wurde mit Hilfe des 



