578 Nachtrag zu dem Generations- iiud VVii-tswecliscl bei Trypaiiosoma und Spirochaete. 



des Satzes von dem St.ückwei-k des \\'isseiis um so melir, je tiefer man sich bemüht in das 

 Objekt einzudringen. 



Für die Beobachtung des lebenden Objekts lassen sicli schwer Anweisungen geben, der 

 Erfolg- hierbei hängt von zu vielen Faktoren ab, unter denen das Talent des Beobachters selbst 

 wohl die wesentlichste Rolle spielt, der sich dann die Übung hinzugesellt. Ich habe bei Vielen 

 gesehen, wie leicht aber auch wie schwer das Sehen am lebenden Plasma gelernt werden kann. 

 Das Variieren der Beobachtungsbedingungen, "Wechsel von Tageslicht und künstlichem Licht, 

 Blendenbenutzung und die Kunst der JOkrometerschraubenführung müssen zu gewisser Virtuosität 

 ausgebildet werden, für die es keine Lehrbücher gil)t. Die l^esten Übungsobjekte bilden jeden- 

 falls, wie ich schon in meiner Malariaarbeit ausgeführt habe, die Protozoen mit ilirer Mannig- 

 faltigkeit der Lebensbetätigung auf kleinstem Räume. 



Von den Konservierungsmethoden leistet keine Vollkommenes, sie sind nur ein Notbehelf 

 Aber die Kombination verschiedener derselben dürfte uns doch ein annäliernd richtiges Bild des 

 Objekts geben, indem die eine diesen Teil der Zellen, eine andere jenen besser erhält. Man kann 

 stets feuchte und trockene Konservierung bei diesen Blutparasiten in allen ihren Stadien anwenden, 

 weil das Medium, das Blut besser bei der Trockenmethode erhalten bleibt, während die Parasiten 

 bei feuchter Behandlung weniger leiden. 



L Nasse Konservierungsmethoden. 



Dieselben wurden angewendet für folgende Sorten von Präparaten: 



1. Deckglasausstrichc des Eulenblutes (cf. meine Malariaarbeit, S. 190). 



2. ,, der Organe der Eule (Milz, Knochenmark, Leber, Niere usw.). 



3. „ des Eulenblutes aus dem Mückendarm. 



4. „ der Organteile der Mücken (Durchschnitte, Malpighische Gefäße, Eier usw.). 



5. Tupfpräparate der in 2 und 4 erwähnten Organe. 



6. Totokonservierung der Mückenorgane für direkte Montierung oder Schnittmethode. 



7. Totokonservieriing der Organstücke der Eulen für die Schnittmethode. 



a) Sublimat-Alkohol (2:1). Zwei Teile konzentr. wässeriger Sublimatlösung und 1 Teil 

 Ale. absol. mit oder ohne Zusatz einer Spur Eisessig heiß angewendet. Auswasidien 

 in Jodalkoho], Härtung in Alkohol steigender Konzentration. Färbung mit Orenachers 

 Hämatoxylin (konzentriert kurze Zeit, stark verdünnt lange Zeit bis 48 Stunden), 

 Heidenhains Eiseuhämatoxylin, Romanowsky-Methoden (cf Trockenmethoden), Unter- 

 suchung in Wasser, Glycerin oder Kanadabalsam. Blutkörperchen der Eule werden 

 deformiert, Parasiten auch oft; gut erhalten sind die entoplasmatischen Strukturen 

 der Parasiten Tind die Kerne; gut für 4, 5, 6, 7; weniger gut für 1 — 3. Kernfärbung 

 bei Grenadier für Chromatinbildungen besser, bei Heidenhains Färbung für Plastin 

 und Centrosomen; schlecht für die äußere Körperform und die periplasmatischen 

 Organellen der Flagellaten-Stadien. 



b) Osmium-Gemische. Es kamen Flemmingsche und Hermannsche Mischung zur An- 

 wendung ohne wesentliche Unterschiede aufzuweisen. "Weiterbehandlung wie bei a) 

 bis auf das Auswaschen, das mit "Wasser erfolgte. Fäi'bung wie bei a), Untersuchung 

 ebenso. Blutkörper der Eule besser als bei a), aber auch noch deformiert. Äußere 

 Köri)erform der Parasiten meist bessei'. Entoplasma und Kerne schlechter. Oentro- 

 somen und Plastin besser. Chromatin schlechter. Periplasma gut. Im allgemeinen 



