Die Muskulatur von Helix pomatia L. 491 



benutzte ich Sclmittpräparate nur zur Nachprüfung des auf makroskopischem 

 Wege oder mit Hilfe von Binocular und Rasiermesserschnitten Gefundenen. Zu 

 den makroskopischen Untersuchungen dienten in erster Linie nur erwachsene 

 Schnecken, da bei den aufpräparierten jungen Schnecken keine Abweichungen 

 in den in Betracht kommenden Körperteilen von den älteren Tieren gefunden 

 wurden. Gewöhnlich wurden die im abgekochten Wasser erstickten Tiere auf- 

 geschnitten, in Präparierschalen festgesteckt und 1^2 Tage lang zur Maceration 

 des zarten Bindegewebes mit Wasser bedeckt. Sodann wurde eine 4 — 5% Lösung 

 von Formaldehyd aufgefüllt, in der die Tiere bis zum Ende der Untersuchungen 

 blieben; aus gesundheitlichen Gründen wurde nur beim Arbeiten das Formol 

 durch Wasser wieder ersetzt. Je länger das Formol einwirkte, um so fester und 

 geschlossener traten die einzelnen Muskellagen, ohne zu schrumpfen, zutage; 

 die größeren Muskelbündel traten scharf hervor, da die einzelnen Fasern ein 

 helles, oft silbern blinkendes Aussehen bekommen hatten. So war ein leichtes 

 Anfärben mit Boraxkarmin, wie es Beck (1912) zum Studium des Pharynx 

 empfiehlt, unnötig. 



Große Schwierigkeiten bereitete der Fuß; sowohl das Arbeiten am Total- 

 präparat als auch Mikrotomschnitte durch ihn führten infolge seines fast unent- 

 wirrbaren Muskelgeflechtes nicht zum Ziel. Ich zerlegte daher die in Formol 

 gehärteten Tiere mit Hilfe des Rasiermessers in Serienschnitte; ein Bestreichen 

 der Schnittfläche mit heiß eingedickter Gelatinelösung, die bald erkaltete und 

 hart wurde, ließ auch dünnere Schnitte zu. Um ein Einfallen der Körperhöhle 

 und ein Auseinanderfallen von Mantel und Fuß zu verhüten, wurden die Körper- 

 höhle und die Fugen zwischen Mantelrand und Fuß ebenfalls mit stark einge- 

 kochter Gelatine ausgegossen. Klemmleber eignete sich nicht so gut zum Schneiden, 

 weil der Druck der Leber die Form des Fußes zu sehr veränderte, bei geringem 

 Druck aber der Fuß keinen Halt in der Leber fand. • — So konnte ich mit Hilfe 

 der Gelatinemethode schnell und leicht Serienschnitte durch alle Ebenen des 

 Fußes erlangen, die trockenen Schnitte wurden zur leichteren Aufbewahrung 

 mit Gelatine auf Glasplatten aufgeklebt, 1 — 2 Tage in 10 — 15% Formollösung 

 gehärtet, so dann in einer 4 — 5% Formollösung aufgehoben. Ich benutzte zum 

 Aufkleben der Schnitte alte jjhotographische Platten (9 : 12), die sowohl sehr 

 bequem in größeren Glasgefäßen zusammen aufgehoben als auch einzeln in kleinen 

 Präparierschalen zur Durchsicht der Schnitte verwandt werden konnten. Schwarz 

 ausgegossene Präparierschalen eigneten sich sehr gut zur Durchsicht, da die durch 

 die Formolbehandlung weißlich schimmernden zarten MuskeKasern sich dann 

 gut vom schwarzen Untergrund abhoben. Eine Injection der Blutgefäße, der 

 Blutlacunen und des Fußes mit Karmin konnte noch zum Hervorheben der glän- 

 zenden feinen Muskelfasern des Fußes dienen. Gearbeitet wurde mit dem Binocular 

 von ZEiss-Jena: Ocular 1 und 2, Objektiv ao und ag. 



Zu den mikroskopischen Untersuchungen wurden sowohl eben ausgeschlüpfte 

 und einjährige Tiere ganz in Paraffin eingebettet und geschnitten, als auch ein- 

 zelne Teile, wie Pharynx, Fuß, Mantelrand und Tentakeln, von erwachsenen 

 Schnecken zu Schnitten verarbeitet. Da die Schnitte ausschließlich morpholo- 

 gischen Zwecken dienen sollten, wurden sie in Dicke von 10 — 25 ^ angefertigt. 

 Die zu schneidenden Tiere wurden durch Injection mit 10% Cocainlösung getötet, 

 mit Zenker konserviert und mit Delafields oder Heidenhains Haematoxylin, 

 Eosin oder van Gieson gefärbt. 



33* 



