488 Artur Brück, 



die kräftige Durchfärbung mit Säurefuchsin sind die Fibrillen sehr klar zu erkennen 

 und eignen sich auch zu histologischen Untersuchungen. 



In einigen Fällen wurde auch als Doppelfärbung Borax- Picroindigcarmin 

 angewandt. Es färbten sich die Kerne dunkelrot, das Epithel hellrot, die Muskeln 

 grün. 



Zu histologischen Untersuchungen wurde meist das Eisenhämatoxylin ver- 

 wandt. Auch Zusammenstellungen wie Eisenhämatoxylin-Säm-efuchsin oder 

 Eisenhämatoxylin-Eosin-Lichtgrün wurden, allerdings selten, ausgeführt. Will 

 man eine Verklebung von Fibrillen vermeiden, so eignet sich Coernlein S und 

 Coernlein-Safranin recht gut zu Fibrillenfärbungen. 



Da im letzten Teil der histologischen Untersuchung auch die von Meves 

 und DuESBERG beobachtete Entstehung der Muskelfibrillen aus Piastosomen 

 auch bei Anodonfa nachgeprüft werden mußte, so benutzte ich folgende Kon- 

 servierung und Färbung: 



1. Fixieren 3x24 Stunden mit Flemmings starkem Gemisch modif. : 



V2/oig^ Chromsäure (Zusatz 1% Kochsalz) 15 ccm 



2%ige Osmiumsäure 3 — 4 ccm 



Eisessig 3 — 4 Tropfen 



(Nach 2 — 3 Stunden geringer Zusatz von Eisessig, um die Schale etwas zu 



zersetzen und die Anodonta aus der Schale zu lösen, ohne das Haftepithel zu 



zerstören. ) 



2. 1 Stunde wässern. 



3. 24 Stunden in Holzessig und l%ige Chromsäure (zu gleichen Teilen). 



4. 24 Stunden wässern. 



5. Steigender Alkohol, Xylol, Paraffin. 



Färben : 



1. 24 Stunden in 4^Qige Lösung von Eisenalaun. 



2. Abspülen in Aqua dest. ; dann 24 Stunden in Lösung von Sulfalizarin- 



saurem Natron (Verdünnung einer gesättigten wässerigen Lösung von 1 ccm 

 auf 80 — 100 ccm Aqua dest.). 



3. Abspülen in Aqua dest. 



Dann Erwärmen des Objektträgers mit Schnitten in einer Lösung von 

 3%iger alkoh. Lösung von Kristallviolett mit gleichem Quantum Anilin- 

 wasser bis Dämpfe aufsteigen. 



4. 1 — 2 Minuten differenzieren in 30'^'Qiger Essigsäure. 



5. 5 — 10 Minuten waschen in Leitungswasser (der Farbton wird rötlich). 



6. Schnitte mit Fließpapier abtrocknen, kurz in Alkohol abs., dann 10 Minuten 

 in Bergamottöl, Xylol, Canadabalsam. 



Da sich das Sarcoplasma gerade bei Anodonta sehr stark färbt, wurde in 

 2. mit Erfolg eine Verdünnung von 1 ccm gesättigter wässeriger Lösung auf 200 

 bis 250 ccm Aqua dest. vorgenommen, wonach das Plasma kaum, doch die lübrillen 

 recht deutlich gefärbt waren. 



Endlich war es notwendig zur Klärung der Physiologie der Muskelfasern 

 noch die Ai't der Innervierung zu untersuchen. Zu diesem Zweck wiu-de 

 GoLGis schwarze Reaktion in zwei Methoden angewandt: 1) die kleinen Stücke 

 kamen in eine frischbereitete Lösung von 54 ccm 3,5%igem Kaliumbichromat und 

 6 ccm 2%iger Osmiumsäure. Im Dunkeln bei 25 ° C verblieben sie darin 3 — 15 Tage, 



